Descargar

Isquemia cerebral y neuroprotección (página 3)


Partes: 1, 2, 3

TRATAMIENTO DE LA ISQUEMIA CEREBRAL.

Actualmente, el tratamiento de la fase aguda de la isquemia cerebral comprende solamente medidas generales, ya que los tratamientos específicos todavía no están bien establecidos. Como primera pauta está la atención inmediata, controlando aspectos generales como las funciones respiratoria (tratamientos broncodilatadores) y hemodinámica (deshidratación, control de la tensión arterial, mantenimiento de la función cardiaca).

Para el tratamiento activo del edema cerebral se emplean diuréticos osmóticos como el manitol al 20%, aunque su uso está justificado solamente por trabajos y observaciones empíricas. De manera que en la mayoría de los casos el tratamiento depende de los síntomas generales del paciente (Miranda, 2004).

El período durante el cual los cambios isquémicos pueden ser reversibles constituye la ventana terapéutica (Danica, Dejan, Markivic, Spatz, Bogomir, 1994; Fisher, 1999). Para los neurólogos una ventana terapéutica aceptable para un neuroprotector está entre 4 y 6 horas. Teniendo en cuenta la fisiopatología del ictus se pueden derivar tres posibles estrategias en el tratamiento orientadas a minimizar las consecuencias del accidente cerebrovascular isquémico: 1) incrementar las reservas energéticas de las células (tratamiento profiláctico exclusivamente), 2) minimizar el daño restableciendo la perfusión lo antes posible (terapias trombolíticas), y 3) neuroprotección propiamente dicha.

La restauración temprana de la reperfusión del área afectada (terapia trombolítica) se ha demostrado como una terapia farmacológica efectiva tanto en modelos animales como en ensayos clínicos (NINDS rt-PA stroke study group, 1995), y la única aprobada para su uso en clínica. Se debe tener en cuenta también que si la isquemia es lo suficientemente prolongada, el tratamiento trombolítico no sólo no resulta efectivo, sino que exacerba el daño por reperfusión. Por último, la neuroprotección consiste en impedir o limitar farmacológicamente la progresión de la cascada isquémica en el tejido cerebral una vez que ésta se ha iniciado (Pérez, 2005).

Fig. 3. Enfoque de la neuroprotección

Según su mecanismo de acción primario, las estrategias neuroprotectoras se pueden clasificar en los siguientes grupos (Dorman, Counsell, Sandercock, 1996):

  1. 1- Moduladores del sistema de aminoácidos excitadores.
  2. 2- Moduladores del flujo de calcio.
  3. 3- Activadores metabólicos.
  4. 4- Agentes anti-edema.
  5. 5- Inhibidores de la adhesión leucocitaria.
  6. 6- Secuestradores de radicales libres.
  7. 7- Promotores de la reparación de membranas e inhibidores de su degradación.
  8. 8- Compuestos con efectos desconocidos.

Para un futuro próximo no sólo puede precisar de la combinación de sustancias neuroprotectoras, sino de su asociación con fibrinolíticos, al objeto de optimizar su eficacia y permitir una mayor acción del efecto neuroprotector en el tejido recanalizado, reduciendo el posible daño por reperfusión y, posiblemente, ampliando en el tiempo la ventana terapéutica. En el campo experimental, sustancias como el anticuerpo anti-CD18 (anticuerpo antiadhesión de los leucocitos), en combinación con el fibrinolítico rt-PA, han mostrado capacidad no sólo de reducción del volumen del infarto, sino de ampliación de la ventana terapéutica frente a las sustancias utilizadas aisladamente (Takano, Tatlisumak, Formato, 1997).

Resulta importante que se utilicen a nivel experimental combinaciones de sustancias neuroprotectoras, aunque no hayan demostrado eficacia clínica por separado, ya que la complejidad del proceso de la isquemia cerebral reduce sensiblemente las posibilidades de éxito en solitario (Ginsberg, 1997; Fisher, 1999).

NEUROPROTECCIÓN

Bases de la neuroprotección.

La neuroprotección es una estrategia de tratamiento terapéutico o también profiláctico, cuyo objetivo fundamental es prevenir u oponerse a la pérdida neuronal patológica que ocurre en enfermedades del SNC de diferentes orígenes, como por ejemplo en el ictus, neurotrauma y enfermedades neuroinflamatorias y neurodegenerativas (Sirén & Ehrenreich, 2001; Grasso, Sfacteria, Cerami, Brines, 2004).

Las modernas técnicas de imagenes han mostrado que el volumen del infarto se extiende durante varios días en los humanos (Karonen, 1999). La lesión del cerebro inducida por la oclusión de MCA experimental también madura y crece como una función de tiempo. El área de penumbra isquémica se caracteriza como una región con flujo sanguíneo cerebral reducido sin propiedades de excitabilidad eléctrica, pero donde no se perturban irreversiblemente los gradientes de iones (Astrup, 1981). De esta manera la penumbra isquémica ofrece una ventana de tiempo extendida para la terapia de neuroprotectores. La penumbra isquémica puede visualizarse con diferentes técnicas de imagenes y su recuperación o conversión al infarto se ha documentado en los modelos experimentales (Heiss, 2000). Los estudios en animales indican que si el suministro de la sangre no se restaura y el tejido no es protegido metabólicamente en un periodo de 6 horas, la región de penumbra se deteriora y contribuye al agrandamiento centrífugo del centro isquémico (Ginsberg 1997b). Se piensa por consiguiente que la terapia neurprotectora aguda también pudiera ayudar a los pacientes y que los neuroprotectores deben administrarse dentro de 6 horas (Muir & Grosset , 1999).

La muerte celular que sigue el isquemia cerebral focal involucra necrosis y mecanismos apoptoticos (Rodríguez, Galvizu & Alvarez, 2002). Las alteraciones metabólicas en la isquemia cerebral focal han sido bien caracterizadas. La disminución del trifosfato de adenosina (ATP) en relación con el grado de reducción del FSC ha sido documentada por muchos investigadores (Hoehn-Berlage, Norris, Kohno, 1995). Las regiones cerebrales con acentuada disminución del flujo sanguíneo cerebral pueden alcanzar los niveles de disminución del ATP que se asocian con lesión irreversible en un período de unos 30 minutos a partir del inicio de la isquemia, en tanto que el grado del agotamiento del ATP en regiones con isquemia menos intensa es más limitado. Ahora bien, con el tiempo, las reservas del ATP pueden disminuir hasta niveles asociados con lesión irreversible incluso en regiones con caída menos acentuada del FSC, lo cual apoya la noción de un daño isquémico que evoluciona con el transcurso del tiempo (Fisher, 1999). En los modelos de oclusión temporal, el metabolismo de la glucosa en la zona densamente isquémica se incrementa inicialmente para luego disminuir (Hoehn-Berlage, Norris, Kohno, 1995). La resonancia magnética espectroscópica puede ser útil para obtener información in vivo acerca del estado bioquímico del tejido isquémico focal en animales y en humanos (Gillard, Barker, van Zijl, Bryan, Oppenheimer, 1996). Así, se han observado disminuciones agudas en el ATP junto con elevaciones del ácido láctico.

Por tanto el objetivo fundamental de la neuroprotección es proteger aquella zona de penumbra isquémica, que es muy difícil de determinar en una clásica tomografía computarizada o una resonancia maganética clásica, dada las características funcionales de estas técnicas, y por consiguiente es posible rescatar para mejorar la calidad de vida de los pacientes afectados por un ictus (Fig.3). En este principio se basa la mayoría de los estudios de fármacos para neuroprotección, ademas de promover los factores neurotroficos que garanticen una neuroplastidad del tejido cerebral.

Neuroprotección endógena.

En la isquemia también se activan mecanismos endógenos protectores (García-Salman, 2004; Dirnagl, Simon, Hallenbeck, 2003; Mergenthaler, Dirnagl, Meisel, 2004). Hace más de una década se descubrió que si bien la isquemia repetitiva inducía un daño mayor que la suma total en tiempo de los insultos, el espaciamiento de los insultos podía inducir neuroprotección. Más tarde se descubrió que la aplicación de un insulto subletal induce en el tejido cambios que lo capacitan para resistir insultos letales posteriores. Otros estímulos, como la hipoxia y la depresión propagada cortical, provocan respuestas similares. Todos tienen en común la inducción selectiva de genes específicos que actúan de forma concertada para incrementar el potencial de supervivencia de las células nerviosas y promover la recuperación funcional. La administración de algunos de estos genes o de las proteínas que codifican, entre las que se destacan los factores neurotróficos, ha permitido la obtención de resultados interesantes en modelos experimentales de isquemia global y focal, que se relacionan, sobre todo, con la inhibición de la apoptosis neuronal inducida por la isquemia. Estos resultados inducen a pensar en un enfoque alternativo para la protección neuronal, que considera la respuesta endógena del cerebro como una opción prometedora para la terapéutica (Accidente Cerebrovascular, 2002)

Estos mecanismos son la base molecular de la tolerancia a la isquemia y se estudia muy en detalle por grupos de investigadores (Weih, Kallenberg, Bergk, Dirnagl, Harms, 1999; Dirnagl, Simon, Hallenbeck, 2003). Por ejemplo un estímulo generado por un estado hipóxico es factor 1 inducible por hipoxia (HIF-1). HIF-1 es uno de los sensores céntricos de la hipoxia e induce la expresión de proteínas con actividad angiogénica, eritropoyética y neuroprotectora (Prass, Ruscher, Karsch, Isaev, Megow, 2002). Se activan proteínas que ejercen un efecto neuroprotector en aproximadamente el 50% de la lesión estudiada (Prass, Scharff, Ruscher, Lowl, Muselmann, 2003). Esta protección incompleta sugiere que hay otros mecanismos que también juegan un papel esencial en el precondicionamiento de la isquemia, tales como antiexcitatorios, anti-inflamatorios, antiapoptoticos y programas de regeneración y reparación celular (Dirnagl, Simon, Hallenbeck, 2003).

En los últimos años se ha progresado de forma importante en el conocimiento de sustancias que actúan en diferentes puntos de la cascada que conllevan a la muerte por necrosis o por apoptosis y que interfieren con estos procesos prolongando la vida de la neurona (García, Arango, Torres, 2003; Cardona, Arango, Gallego, Pimienta, García, 2004). Estos compuestos aparecen promisorios como neuroprotectores y son el objeto de estudio en animales de experimentación y ensayos clínicos en el humano (Arango, Escobar, Cardona, Pimienta, 2004).

Neuroprotección primaria

La neuroprotección primaria se produce cuando se utiliza un fármaco que incrementa la resistencia de la neurona al daño isquémico, hipóxico, excitotóxico o metabólico. Los antagonistas de receptores de glutamato, los bloqueadores de canales de calcio, los bloqueadores de canales de sodio, los inhibidores de la NO sintasa neuronal, los antagonistas del factor activador de plaquetas y las sustancias fijadoras de radicales libres tienen la capacidad de disminuir el daño cerebral si se instauran rápidamente en los momentos iniciales de la lesión.

Neuroprotección secundaria

La neuroprotección secundaria se refiere a la intervención farmacológica que interfiere con los procesos patogénicos que se desencadenan después de que se ha instaurado la lesión isquémica, hipóxica, excitotóxica o metabólica. Estos procesos más tardíos son responsables de la muerte neuronal de forma necrótica o apoptótica. En este grupo, se incluyen sustancias que pueden disminuir la muerte necrótica tardía, como los inhibidores de enzimas inductoras de inflamación como la NO sintasa inducible o la cicloxigenasa-2, y sustancias que bloquean las citocinas proinflamatorias. Las sustancias inhibidoras de enzimas efectoras de la apoptosis, como los inhibidores de las proteasas de cisteína, los inhibidores de la proteína proapoptótica BAD, y la inhibición del factor asociado a la apoptosis disminuyen la muerte celular programada.

Neuroprotección terciaria

La neuroprotección terciaria se dirige a potenciar la capacidad de recuperación del tejido nervioso previamente lesionado y disminuir la diasquisis. En este sentido, se han utilizado medicamentos que incrementan la disponibilidad de aminas biógenas como los inhibidores selectivos de la recaptación de serotonina, inhibidores selectivos de la recaptación de noradrenalina o las anfetaminas. El mecanismo mediante el cual estas sustancias mejoran la plasticidad neuronal y la recuperación del tejido aún no se ha dilucidado. Los factores tróficos, como el factor de crecimiento de fibroblastos, el factor de crecimiento endotelial y la eritropoyetina, entre otros, han incrementado la recuperación después de una lesión cerebral, no sólo por su capacidad de neovascularización, sino también por un efecto trófico directo sobre la neurona a través de genes que facilitan la reparación y la supervivencia.

La comprensión de estos mecanismos nos permitirían en el futuro inducir protección en pacientes como una estrategia nueva salvaguardar el cerebro contra la hipoxia cerebral, ya que los resultados mencionados demuestran que las celúlas del cerebro no es sólo desafían mecanismos deletéreos sino que también activan programas innatos que las protegen de la isquemia (García Salman, 2004, Mergenthaler, Dirnagl, Meisel, 2004).

Medicamentos neuroprotectores.

Hasta el presente, no existe una droga que sea lo suficientemente efectiva, específica y de seguro acceso al SNC, para ser usada como neuroprotector en enfermedades neurológicas en etapa crónica o aguda. Además, la mayoría de los agentes o drogas utilizados como neuroprotectores efectivos en biomodelos de isquemia fallan por no ser toleradas clínicamente (Stanimirovic, Micic, Markovic, Spatz, Mrsulja,1994; Doppenberg; Choi, Bullock,1997).

El conocimiento progresivo de la compleja fisiopatología de la isquemia cerebral, ha condicionado el desarrollo de una gran cantidad de sustancias para bloquear, a diferentes niveles, la cascada isquémica. Muchas de estas sustancias han demostrado una considerable eficacia en diversos modelos animales de isquemia cerebral, especialmente reduciendo el tamaño del infarto. Sin embargo el traslado de estos resultados a la clínica humana no ha sido exitoso (Diener, 1999; Grotta, 1997; Davis, Alber, Diener, Lees, Norris, 1997; Grotta 1997). La excepción ha sido el activador tisular del plasminógeno (tPA) (NINDS rt-PA stroke study group, 1995), aunque tiene una utilidad limitada, por lo que todavía se continúa en la búsqueda de terapias aplicables de una forma más general para el tratamiento de la isquemia aguda y el infarto hemorrágico (Diener, 1998).

No obstante, nuevas investigaciones van más allá de resolver partes del problema de la cascada isquémica e invocan terapias combinadas y el uso de moléculas propias de la neuroprotección endógena (Dirnagl, Simon, Hallenbeck, 2003; García Saman, 2004).

Entendemos el fenómeno de la neuroprotección como el conjunto de procesos encargados de mantener la función del cerebro adulto. Al igual que el sistema inmune cuenta con una infraestructura encargada de preservar la respuesta inmune, el sistema nervioso parece disponer de una organización similar de manera que su función no se vea constantemente comprometida. Esta organización funcional, entre otras cosas, incluiría factores humorales tales como el IGF-I encargados de corregir cambios fisiológicos o patológicos dentro de una red de señales de procedencia central y periférica (Rodríguez, Galvizu, lvarez, 2002).

La ventana terapéutica de un neuroprotector.

El intervalo de tiempo durante el cual un fármaco neuroprotector puede reducir o impedir la lesión cerebral se denomina ‘ventana neuroprotectora’. La llamada ‘ventana terapéutica’ (VT) englobaría a las ventanas de reperfusión y neuroprotección (Pulsinelli, 1992). Cuando se ocluye una arteria cerebral, se origina un área central de intensa isquemia rodeada de una zona con menor reducción del FSC y en el que la perfusión se mantiene por la circulación colateral. Del estado y la competencia de estas colaterales dependerá en buena parte el tamaño y la intensidad de la zona isquémica. La viabilidad y funcionalismo neuronal dependen y fallan en relación con determinados umbrales críticos de FSC regional (Astrup, Siesjö, Symon, 1981).

Cuando el FSC se encuentra por encima de 20 ml/100 g/minuto, no se producen alteraciones metabólicas ni funcionales en el cerebro. Sin embargo, por debajo de este umbral la actividad eléctrica cerebral falla y aparecen los síntomas neurológicos. La disminución del FSC va a desencadenar a nivel neuronal una compleja serie de alteraciones bioquímicas y reacciones metabolicas.

El poder documentar la existencia de una penumbra isquémica tiene implicaciones que van mucho más allá de ser una curiosidad científica asociada a la investigación acerca de la naturaleza de la lesión isquémica cerebral focal y su evolución. La determinación acerca del tiempo durante el cual evoluciona la penumbra isquémica y cómo se produce la progresión de la misma hasta constituir una lesión irreversible tienen gran relevancia en el desarrollo de una terapia efectiva en la ECV aguda (Fisher & Takano, 1995). Si ponemos a un lado los medicamentos dirigidos a restaurar la función, pero no a disminuir el tamaño del infarto, la diana hacia la cual se dirigen nuestras intervenciones es precisamente ese tejido en penumbra isquémica. No es posible para los clínicos determinar la existencia o no de un área de penumbra isquémica a partir del examen neurológico.

Se asume que mientras más tiempo transcurre a partir del inicio de los síntomas, menor es la zona de penumbra remanente, así como que cuanto más precoz sea la instauración del tratamiento mayor será la probabilidad de un efecto beneficioso a partir de la utilización de agentes trombolíticos y neuroprotectores. El tiempo aceptable para incluir a los pacientes en estudios aleatorios ha aumentado de 24-48 horas en los estudios con nimodipino a finales de la década de los 80, hasta 3 horas en el estudio del NINDS con rtPA a principios de los 90. En la actualidad, la mayoría de los ensayos clínicos incluyen sólo a pacientes dentro de las primeras 6 horas a partir del comienzo del cuadro (Wahlgren, 1998; Clark, Warach, Pettigrew, 1997).

La normalización del flujo sanguíneo cerebral (FSC) promueve una recuperación completa solo cuando tiene lugar muy precozmente y puede contribuir a evitar la extensión del infarto en las primeras 3-6 h (ventana para la reperfusión). De no ser así, la cascada isquémica se torna imparable y es incluso potenciada por la reperfusión, que por sí misma es responsable de otros daños.

Estos efectos pueden ser minimizados mediante citoprotectores, dentro de un tiempo limitado denominado ventana de citoprotección, probablemente más amplia (8-12 h), antes de que la lesión se complete y se vuelva irrecuperable (Hill & Hachinski, 1998; Lainez & Santonja, 1999 Miranda, 2004). En la práctica, el tiempo desde el establecimiento de los síntomas de la isquemia y su tratamiento es un factor crítico que determina la eficacia de la neuroprotección.

De ahí podemos inferir que en dependencia de la farmacocinética del neuroprotector ensayado y su potencial de toxicidad, es recomendable que la duración del tratamiento se prolongue al menos durante 72 horas. La normalización del flujo sanguíneo cerebral (FSC) promueve una recuperación completa solo cuando tiene lugar muy precozmente y puede contribuir a evitar la extensión del infarto en las primeras 3-6 h (ventana para la reperfusión). De no ser así, la cascada isquémica se torna imparable y es incluso potenciada por la reperfusión, que por sí misma es responsable de otros daños. Estos efectos pueden ser minimizados mediante citoprotectores, dentro de un tiempo limitado denominado ventana de citoprotección, probablemente más amplia (8-12 h), antes de que la lesión se complete y se vuelva irrecuperable (Hill & Hachinski, 1998; Lainez & Santonja, 1999 Miranda, 2004). En la práctica, el tiempo desde el establecimiento de los síntomas de la isquemia y su tratamiento es un factor crítico que determina la eficacia de la neuroprotección.

En neuroprotección, la ventana para el inicio del tratamiento más aceptada se considera hasta las 12 horas, no obstante, existen experiencias que nos demuestran que la viabilidad de parte del tejido cerebral en penumbra isquémica puede extenderse mas allá de las 48 o 72 horas. Por ello, valorando naturalmente la farmacocinética del neuroprotector a estudio, es recomendable que la duración del tratamiento se prolongue al menos durante estas 72 horas (Mintorovich, Yang, Shimizu, 1994).

La heterogeneidad del infarto cerebral en sus mecanismos y causas que actualmente pueden cumplir criterios de inclusión en un ensayo clínico (incluidas las hemorragias) contrasta con una ventana de tiempo rígida, lo cual puede disgregar la muestra y restar sensibilidad al estudio a la hora de valorar un posible beneficio.

Como se ha podido observar el conocimiento acerca de la fisiopatología de la isquemia cerebral, su modelación en animales y la busqueda de nuevos medicamentos que pudieran mejorar e incluso prevenir el daño al tejido isquémico es fuente inagotable de preguntas para las investigaciones en el campo de las Neurociencias.

La disparidad entre los resultados de los ensayos preclínicos y los clínicos.

Antes de iniciar ensayos clínicos en fase 3 se debería valorar en qué medida éstos cumplen con criterios que puedan anticipar cierta eficacia (Accidente Cerebrovascular, 2002; Krieglstein & Klump, 2002; Hacke, 1997): a) Claro beneficio histológico; b) Eficacia en especies superiores; c) Eficacia dependiente de la dosis, y d) Útil en modelos de reperfusión y con amplia ventana demostrada en estudios experimentales.

En relación con las condiciones ideales en el ámbito clínico que podría cumplir un neuroprotector valoraríamos: el ser aplicable a un amplio rango de subtipos de isquemia cerebral y de gravedad clínica; el carecer de efectos psicótropos y ser bien tolerado por pacientes de cualquier edad y enfermedad concurrente; el ser fácil de administrar, y tener una ventana de tiempo suficiente (Fisher, 1999). Por otra parte, la mejor tolerancia de los efectos adversos, o un umbral de detección más alto en los estudios experimentales, puede reflejarse en los resultados de los ensayos clínicos.

Para la realización de estudios preclínicos es necesario un conocimiento amplio de los modelos in vivo e intro que tiene el diseño de modelar cualquier enfermedad tanto en animales como en el hombre (Alonso, Diez-Tejedor, Carceller, Roda, 2001; Banks, 2004). Se establecen por las agencias reguladoras en el control de los medicamentos de cada país guías armonizadas que permitan a las firmas productoras de medicamentos establecer las especificaciones para producto.

En términos generales, el neuroprotector ideal debe demostrar eficacia en por lo menos 2 especies evaluando estados neurológicos, reportes histopatológicos y de ser necesario la medición del volumen de infarto. Se debe evalaluar en por lo menos 2 laboratorios que usen modelos diferentes. Si el sitio de acción es el cerebro, la droga ideal debe alcanzar concentraciones en el cerebro tan rápidamente como en el plasma.

Deben considerarse los estudios de biodistribución, bioequivalencia, farmacocinética y farmacodinamia así cmo los estudios de seguridad y toxicidad que demuestren que el neuroprotector tiene un mínimo de efectos adversos. Además se deben presentar a la agencia regulatoria los estudios de dosis efecto en modelos de isquemia en pequeños roedores y de ser necesario estudios en modelos de animales mayores como son el gato, perro y primate (Mostacero, 1999; Alonso, Diez-Tejedor, Carceller, Roda, 2001; Traysman, 2003).

La búsqueda de moléculas similares a las que produce el organismo para la citoprotección es una tendencia en la investigación de los medicamentos en la actualidad. Un ejemplo de molécula endógena y que tiene un uso como estimulante de la eritropoyesis es la eritropoyetina humana recombinante (rHu-EPO) producida por los seres vivos que tiene su efecto a partir de inducida su producción en e riñón a través de la estimulación del Factor I inducible de la hipoxia. Se ha demostrado que tiene un efecto citoprotector en otros tipos celulares como el corazón y las neuronas (van der M, Voors, Lipsic, Wiek, van Gilst, et al, 2004). Por tal motivo pensar en terapia neuroprotectora a partir de elementos producidos por el mismo organismo es una tendencia actual en la investigación en las Neurociencias.

Por lo general, los estudios con modelos experimentales se basan en la comparación entre un estado sano y otro isquémico para después establecer criterios de semejanza-diferencia entre estos estados y el correspondiente a un grupo tratado. En la actualidad, estos criterios se resumen en el volumen de infarto medido o estimado a través de análisis de imágenes en la fase aguda y la supervivencia de las neuronas piramidales de CA1, ya en el período sub agudo o crónico (Traysman, 2003).

Prácticamente no es posible recomendar un preparado o procedimiento con propiedades terapéuticas que no haya demostrado eficacia en reducir el volumen de infarto o inhibir la muerte neuronal retardada en el hipocampo. En cambio, los criterios funcionales no han recibido la misma atención (Hossman, 2006).

En un estudio canadiense (De Bow, Clark, MacLellan, Colbourne, 2004), donde fueron revisados los artículos de cinco revistas punteras en la temática, se encontró que aproximadamente dos terceras partes de los trabajos publicados en el nuevo milenio basaban sus conclusiones en criterios morfológicos solamente, y sólo la tercera parte incluía criterios funcionales, tales como la evaluación de la integridad motora o cognitiva. Sin embargo al paciente se le evalúa mediante criterios funcionales, presentes en las escalas neurológicas, de discapacidad o de calidad de vida que se usan en el diagnóstico y el seguimiento de estos pacientes (Castillo, Martí-Vilalta, Martínez-Vila E, Matías-Guiu, 1999).

El volumen del infarto dependerá fundamentalmente de la duración de la isquemia y de la severidad de la misma, así como de otros factores como son: temperatura corporal, presión arterial, glucemia, pH y presiones parciales de oxígeno y dióxido de carbono en sangre. Pese a que hace ya bastante tiempo que se conoce la influencia de estos parámetros hemodinámicos y metabólicos sobre el resultado de la isquemia, en la actualidad la mayoría de estudios publicados sobre neuroprotección son llevados a cabo sin tenerlos en cuenta (Pérez , 2005).

Otros de los factores que no han sido controlados en los ensayos clínicos son: la hipertensión o hipotensión, la glicemia y las infecciones, factores profundamente asociados con el volumen de infarto en estudios preclínicos.

El manejo inadecuado de estas variables puede aumentar la mortalidad en un 50%, enmascarando el supuesto efecto beneficioso de la droga estudiada (Grotta, 1994; De Keyser, Sulter, Luiten, 1999). En la clínica, los pacientes acuden después del establecimiento de los síntomas, por lo general con un deterioro manifiesto de su árbol vascular y con una historia asintomática de cambios que se han ido produciendo, imposible de precisar.

Además, la mayor parte de los estudios en modelos de isquemia se realizan a corto plazo, basándose en el hecho de que los tratamientos establecidos en las primeras horas del establecimiento de los síntomas tienen una mayor probabilidad de convertirse en una terapéutica efectiva. Sin embargo, muchos agentes terapéuticos considerados efectivos en estudios de la fase aguda han resultado ser indistinguibles de su vehículo en la etapa sub aguda o crónica.

Por otra parte, la enfermedad cerebrovascular isquémica presenta, una vez lograda la supervivencia, un mayor porciento de secuelas invalidantes susceptibles de ser tratadas y resueltas al menos de forma parcial. La contraparte de esta situación en el animal durante el período crónico se ha estudiado mucho menos. Por lo tanto podemos decir que el modelo ideal al que nos proponíamos llegar para el estudio de la isquemia cerebral, definitivamente no existe. En su lugar tenemos aproximaciones cada vez más cercanas a cada una de las numerosas manifestaciones del fenómeno real. De manera que, tanto para conocer qué ocurre durante el proceso, como para saber cómo revertirlo, los modelos animales han constituido un trampolín por donde se han producido saltos en el conocimiento humano durante los últimos cincuenta años.

REFERENCIAS- BIBLIOGRAFÍA:

Annual Health Statistcs report. (1999), 21.

Abumiya T, Lucero J, Heo JH, Tagaya M, Koziol JA, Copeland BR, del Zoppo GJ. (1999). Activated microvessels express vascular endotelial growth factor and integrin αvβ3 during focal cerebral ischemia. J Cereb Blood Flow Metab 9:1038-50.

Accidente Cerebrovascular (2002). Esperanza en la Investigación. National Institute of Neurological Disorders and Stroke. Pub. Seriada de la Red de Recursos e Información sobre el Cerebro (BRAIN del NINDS de EU).

Alonso Leciñana María, Diez-Tejedor Exuperio, Carceller Fernando, Roda Jose María (2001). Cerebral Ischemia: From Animal Studies to Clinical Practice. Should the Methods Be Reviewed?. Cerebrovascular Diseases;11:20-30.

Arango-Davila C, Escobar-Betancourt M,. Cardona-Gómez G.P, Pimienta-Jiménez H. (2004). Fisiopatología de la isquemia cerebral focal: aspectos básicos y proyección a la clínica. Rev Neurol; 39(2): 156-165.

Aronowski J, Samways E, Strong R, Rhoades HM, Grotta JC. (1996). An alternative method for the quantitation of neuronal damage after experimental middle cerebral artery occlusion in rats: analysis of behavioral deficit. J Cereb Blood Flow Metab 16: 705-713.

Astrup J, Siesjö BK, Symon L. (1981).Thresholds in cerebral ischemia: The ischemic penumbra. Stroke 12: 723-725.

Banks WA (2004). Are the extracelular pathways a conduit for the delivery of therapeutics to the brain? Current Pharmaceutical Design, 10:1365-1370.

Belayev L, Zhao W, Busto R, Ginsberg MD. (1997). Transient middle cerebral arteryocclusion by intraluminal suture. I. Three dimensional autoradiographic image-analysis of local cerebral glucose metabolism-blood flow interrelationships during early ischemia and early recirculation. J Cereb Blood Flow Metab, 17: 1266-80.

Cardona-Gómez GP, Arango-Dávila C, Gallego-Gómez JC, Pimienta H, García-Segura LM. (2004). Estrogen inhibits glycogen synthase kinase-3b and modulates the interaction of the microtubule-associated protein Tau with glutamate receptor subunits in post-ischemic hippocampus: implications for hormonal neuroprotective mechanisms. Mol Brain Res 25:178-187.

Castillo J, Martí-Vilalta JL, Martínez-Vila E, Matías-Guiu J. (1999). Manual de enfermedades vasculares cerebrales. Barcelona, España.

Castillo J, Rodríguez I. (2004). Biochemical Changes and Inflammatory Response as Markers for Brain Ischaemia: Molecular Markers of Diagnostic Utility and Prognosis in Human Clinical Practice. Cerebrovascular Diseases, 17:7-18.

Castro Pacheco A, Niembro E, Pérez Pérez V, Hernández García J, Grijalba I. (2001) Comunicación arterial carotidobasilar en gerbos (Meriones unguiculatus). Rev Neurol 2001;32(3): 225-228. Rev Neurol, 32:225-228.

Cheng YD, Al-Khoury L, Zivin JA (2004). Neuroprotection for Ischemic Stroke: Two Decades of Successand Failure. The Journal of the American Society for Experimental NeuroTherapeutics 1:36-45.

Clark WM, Warach SJ, Pettigrew LC. (1997). A randomized dose-response trial of citicoline in acute ischemic stroke. Neurology, 49: 671-8.

Clifton Guy L., MD William,. Taft C, E. Blair Robert, Sung C. Choi, J. De Lorenzo Robert. (1989). Conditions for Pharmacologic Evaluation in the Gerbil Model of Forebrain Ischemia. Stroke, 20:1545-1555.

Corbett D., Nurse S., Colbourne F. (1997). Hypothermic neuroprotection. A global ischemia study using 18- to 20- month old gerbils. Stroke, 28:2238.

Corbett D, Nurse S. (1998): The problem of assessing effective neuroprotection in experimental cerebral ischemia. Prog Neurobiol, 54: 531-548.

Danica B. Stanimirovic, Dejan V. Micic, Marina Markovic, Maria Spatz, Bogomir B. Mrsulja. (1994). Therapeutic window for multiple drug treament of experimental cerebral ischemia in gerbils. Neurochemical, Vol 19(2):189-194.

Davis S.M., Alber G.W., Diener H.C., Lees K.R. and Norris J. (1997). Termination of acute stroke studies involving selfotel treatment: ASSIST Steering Committee. Lancet, 32:349.

De Bow S.B., Clark D.L., MacLellan C.L., Colbourne F. (2004). Incomplete assessment of experimental cytoprotectants in rodent ischemia studies. Can J Neurol Sci, 30: 368-375.

De Keyser J., Sulter G., Luiten P.G. (1999). Clinical trials with neuroprotective drugs in acute ischemic stroke: are we doing the right thing? Trends in Neuroscience, 22: 535.

del Zoppo GJ (1994). Microvascular changes during cerebral ischaemia and reperfusion. Cerebrovasc Brain Metab Rev, 6:47-96. 153.

Diener H-C. (1998). For the European and Australian Lubeluzole Ischemic Satroke Study Group Multinational randomised controlled trial of lubeluzole in acute ischaemic stroke. Cerebrovascular Diseases, 8: 172.

Diener H-C. (1999). Lubeluzole in acute ischemic stroke treatment: lack of efficacy in a large phase III study with an 8-hour window. Stroke, 30: 234.

Dirnagl U, Simon RP, Hallenbeck JM. (2003). Isquemic tolerance and endogenous neuroprotection. Trends in Neurocience, 26 (5): 248-254.

Dombovy ML, Bach-y-Rita P: (1988). Clinical observations on recovery from stroke. Adv Neurol, 47: 265-276.

Doppenberg, E.M; Choi, S.C; Bullock, R. (1997). Clinical trials in traumatic brain injury: what can we learn from previous studies? Neuroprotective agents – Third international conference. Ann NY Acad Sci; 825: 305-22.

Dorman PJ, Counsell CE, Sandercock AG (1996). Recently developed neuroprotective therapies for acute stroke. A qualitative systematic review of clinical trials. CNS Drugs 5:457-74.

Drapier JC, Bouton C. Modulation by nitric oxide of metalloprotein regulatory activities. Bioessays 18:549-56.

Festing MF (2003) Principles—the need for better experimental design. Trends Pharmacol Sci 24:341–5 .

Fisher M. (1999). El objetivo del tratamiento en la enfermedad cerebrovascular aguda y los enfoques terapéuticos neuroprotectores. Rev Neurol , 29:536-544.

Fisher M. Finklestein S.P., Furlan J.A., Goldstein B.L., Gorelinck P.B., Kaste M., Kennedy R.L., Traysman R.J. (1999). Recommendations for standarts regarding preclinical neuroprotective and restorative drug develoment. Stroke, 30, 2752.

Fisher M (2004). The ischemic penumbra—identification, evolution and treatment concepts. Cerebrovasc Dis, 17(Suppl 1):1–6.

Fisher M, Takano K. (1995). The penumbra, therapeutic time window and acute ischemic stroke. Baillieres Clin Neurol; 4: 279-94.

García JH (1992). The evolution of brain infarcts. A review. J Neuropathol Exp Neurol, 51: 38793.

García JH (1984). Experimental ischemic stroke: a review. Stroke, 1:5-14.

García Salman J.D. (2004). Protección neuronal endógena: un enfoque alternativo. Rev Neurol, 38(2), 150.

García-Galloway E, Arango C, Pons S, Torres-Alemán I. Glutamate excitotoxicity attenuates insulin-like growth factor-I prosurvival signaling. Mol Cell Neurosci, 2003; 24: 1027-37.

Garnette R., Sutherland M.D., Gary A., Roland N. A. (1996). Effect of Age in rodent models of focal and forebrain ischemia. Stroke, 27, 1663.

Gillard JH, Barker PB, van Zijl PC, Bryan RN, Oppenheimer SM. (1996). Proton MR spectroscopy in acute middle cerebral artery stroke. Am J Neuroradiol, 17: 873-86.

Ginsberg C, Busto R (1989). Rodent models of cerebral ischemia. Stroke, 20:1627-1642. Ginsberg MD (1996). The validity of rodent brain-ischemia models is self-evident. Arch Neurol, 53:1065-7.

Ginsberg MD. (1997). Injury mechanisms in the ischemic penubra – Approaches to neuroprotection in acute ischemic stroke. Cerebrovasc Dis, 7 (Suppl 2): 7-12.

Ginsberg MD (1997). The new languaje of cerebral ischemia. AJNR Am J Neuroradiol, 18:1435-45.

Ginsberg MD (2003). Adventures in the pathophysiology of brain ischemia: penumbra, gene expression, neuroprotection. The 2002 Thomas Willis Lecture. Stroke, 34:214-23.

Ginsberg MD, Belayev L, Zhao W, Back T, Dietrich WD, Busto R (1996). The pathophysiological significance of metabolism/blood flow uncoupling in acute ischemic and traumatic brain injury. Medpharm Scientific, Stuttgart, Germany. En: Pharmacology of Cerebral Ischemia. Krieglstein J (Ec.). pags. 245-58.

Goldstein LB. (1989). Amphetamine-facilitated functional recovery after stroke. In: Cerebrovascular Diseases Sixteenth Research (Princeton) Conference. Eds. MD Ginsberg and WD Dietrich. Raven Press, New York 303-308.

Grasso G, Sfacteria A, Cerami A, Brines M (2004). Erythropoietin as a tissue-protective cytokine in brain injury: what do we know and where do we go? Neuroscientist, 10:93-98.

Green RA, Cross AJ. (1997). Techniques for examining neuroprotective drugs in vivo. Int Rev Neurobiol, 40:47-68.

Green RA, Odergren T, Ashwood T. (2003). Animal models of stroke: do they have value for discovering neuroprotective agents? Trends Pharmacol Sci, 24:402–408.

Grotta J.C. (1994). The current status of neuronal protective therapy: Why have all neurons protective drugs worked in animals but none so far in stroke patients? Cerebrovascular Disease, 4, 115.

Grotta J. (1997). For the US and Canadian Lubeluzole Ischemic Stroke Study Group Lubeluzale treatment of acute ischemic stroke. Stroke, 28, 2338.

Guevara García Mariela, Rodríguez Raisa, Álvarez León Alina, Riaño Montalvo Annia, Rodríguez P.C. (2004). Mecanismos celulares y moleculares de la enfermedad cerebrovascular isquémica, Rev Cubana Med; 43(4).

Hachinski V. (2000). Thrombolysis and neuroprotection in acute stroke. Syllabi-on CD-Rom. American Academy of Neurology.

Hacke W. (1997): Neuroprotective strategies for early intervention in acute ischemic stroke. Cerebrovascular disease (Suppl)4.

Hass WK. (1983). The cerebral ischemic cascade. Neurol Clin; 1: 34553.

Heiss WD: (2000). Ischemic penumbra: evidence from functional imaging in man. J Cereb Blood Flow Metab, 20: 1276-1293.

Hill MD, Hachinski V. (1998). Stroke treatment: Time is brain. Lancet, 352 (Suppl): 10-14.

Hoehn-Berlage M, Norris DG, Kohno K, (1995). Evolution of regional changes in apparent diffusion coefficient during focal ischemia of rat brain: relationship of quantitative diffusion NMR imaging to reduction of cerebral blood flow and metabolic disturbances. J Cereb Blood Flow Metab, 15: 1002-15.

Hossmann KA. (1994). Viability thresholds and the penumbra of focal ischemia. Ann Neurol, 36: 557-65.

Hossmann K. A. (2006). Pathophysiology and Therapy of Experimental Stroke. Cellular and Molecular Neurobiology, Vol. 26, Nos. 7/8, October/November.

Ishibashi S, Kuroiwa T, Endo S, Okeda R, Mizusawa H (2003) A comparison of long-term neurological symptoms after two different focal ischemic models in Mongolian gerbils. Acta Neurochir, Suppl 86:159-62.:159-162.

Kahn K. (1972). The natural course of experimental cerebral infarction in the gerbil. Neurology, 22:510-515.

Karonen JO, Vanninen RL, Liu Y, Ostergaard L, Kuikka JT, Nuutinen J, Vanninen EJ, Partanen PL, Vainio PA, Korhonen K, Perkiö J, Roivainen R, Sivenius J, HJ A: (1999). Combined diffusion and perfusion MRI with correlation to single-photon. Stroke, 30: 1583-1590.

Kirino T: (1982). Delayed neuronal death in the gerbil hippocampus following ischemia. Brain Res, 239:57-69

Kirino T, Tamura A, Sano K. (1985). Selective vulnerability of the hippocampus to ischemia-reversible and irreversible types of ischemic cell damage. Prog Brain Res, 63: 39-58.

Kirino, T. (2002). Ischemic tolerance. J. Cereb. Blood Flow Meta,. 22:1283–1296.

Krieglstein J., Klump S. (2002). Pharmacology of cerebral ischemia. Rev Mex, 3(3), 179.

Kwakkel G, Kollen B, Lindeman E (2004) Understanding the pattern of functional recovery after stroke: Facts and theories. Restorative Neurology and Neuroscience 22:281-299.

Lainez J.M., Santonja J.M. (1999). Historia natural de la enfermedad vascular cerebral. En: Castillo J, Alvarez, Sabin J, Marti Vilalta JL, Martinez E, Matias Guiu J. Manual de enfermedades vasculares cerebrales. JR Prous, 55.

Levine S, Payan H. (1966). Effects of ischemia and other procedures on the brain and retina of the gerbil. Exp Neurol 16:255-262.

Lipton P (1999). Ischemic cell death in brain neurons. Physiol Rev, 79:1431-568.

Mintorovich J, Yang GY, Shimizu H, (1994). Diffusion-weighted magnetic resonance imaging of acute focal cerebral ischemia: comparison of signal intensity with changes in brain water and Na+, K+-ATPase activity. J Cereb Blood Flow Metab, 14: 332.

Miranda Q. J. A. (2004). Enfermedades cerebrovasculares. Editorial Oriente. Instituto Cubano del Libro.

Montoya CP, Campell Hope LJ, Pemberton KD, Dunnett SB: (1991). The ‘staircase test’: a measure of independent forelimb reaching and grasping abilities in rats. J Neurosci Methods, 36: 219-228.

Mostacero E. (1999). Neurotoxicidad, neuroprotección y ventana terapéutica en la isquemia cerebral. Rev Neurol, 29 (6): 513-514.

Muir K.W. and Grosset D.G. (1999). Neuroprotection for acute stroke. Making clinical trials work. Stroke, 30,180.

Nakayama H, Jorgensen HS, Rashou HO, Olsen TS: (1994). Recovery of upper extremity function in stroke patients: the Copenhagen stroke study. Arch Phys Med Rehabil, 75: 394-398.

Neau J-P, Bogousslavsky J. (1998). Middle cerebral artery syndromes. In: Cerebrovascular disease: pathophysiology, diagnosis, and management. Eds. MD Ginsberg and J Bogousslavsky, Blackwell Science, 997-1027 Malden.

NINDS rt-PA stroke study group (1995). Tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke. N Engl J Med 333:1581-7.

Ohlsson AL, Johansson BB (1995). Environment influences functional outcome of cerebral infarction in rats. Stroke, 26: 644-649.

Okada Y, Copeland BR, Fitridge R, Koziol JA, del Zoppo GJ (1994). Fibrin contributes to microvascular obstructions and parenchymal changes during early focal cerebral ischemia and reperfusion. Stroke, 25:1847-54. 174.

Pérez Asensio FJ. (2005). Isquemia cerebral focal transitoria en rata: caracterización y utilidad del modelo de la sutura intraluminal en el estudio de estrategias neuroprotectoras. Tesis para optar al grado de doctor en ciencias biológicas. Universidad de valencia.

Persson L, Hårdemark H-G, Bolander HG, Hillered L, Olsson Y. (1998). Neurologic and neuropathologic outcome after middle cerebral artery occlusion in rats. Stroke, 20: 641-645.

Mergenthaler Philipp, Dirnagl Ulrich, Meisel Andreas (2004). Pathophysiology of Stroke: Lessons From Animal ModelsMetabolic Brain Disease, Vol. 19, No. 3/4, December.

Prass, K., Ruscher, K., Karsch, M., Isaev, N., Megow, D., Priller, J., Scharff, A., Dirnagl, U., and Meisel, A. (2002). Desferrioxamine induces delayed tolerance against cerebral ischemia in vivo and in vitro. J. Cereb. Blood Flow Metab, 22:520–525.

Prass, K., Scharff, A., Ruscher, K., Lowl, D., Muselmann, C., Victorov, I., Kapinya, K., Dirnagl, U., and Meisel, A. (2003). Hypoxia-induced stroke tolerance in the mouse is mediated by erythropoietin. Stroke, 34:1981– 1986.

Pulsinelli WA. (1992). Pathophysiology of acute ischemic stroke. Lancet, 339: 5336.

Puurunen, Kirsi. (2001). The effects of pharmacotherapy and training on functional recovery after global and focal cerebral ischemia in rats. Series of Reports, No 58, Department of Neuroscience and Neurology, University of Kuopio, 135.

Rodríguez M. L., Galvizu S.R., Alvarez G.E. (2002). Neuromodulación farmacológica en la enfermedad cerebrovascular. Temas actualizados. Rev. Cubana Med, 41(2).

Rogers DC, Campbell CA, Stretton JL, Mackay KB (1997). Correlation between motor impairment and infarct volume after permanent and transient middle cerebral artery occlusion in the rat. Stroke, 28: 2060-2066.

Shigeno T, Teasdale GM, McCulloch J, Graham DI (1985). Recirculation model following MCA occlusion in rats. Cerebral blood flow, cerebrovascular permeability and brain edema. J Neurosurg, 63:272-7.

Sirén AL y Ehrenreich H. (2001) EPO – a novel concept for neuroprotection. Eur Arch Psychiatry Clin Neurosci, 251: 179–184.

Stroemer RP, Kent TA, (1998). Hulsebosch CE: Enhanced neocortical neural sprouting, synaptogenesis, and behavioral recovery with D-amphetamine therapy after neocortical infarction in rats. Stroke 29: 2381-2395.

Takano K, Tatlisumak T, Formato J. (1997). A glycine site antagonist attenuates infarct size in experimental focal ischemia: postmortem and diffusion mapping studies. Stroke; 28: 1255-63.

Tamura A, Graham DI, McCulloch J, Teasdale GM (1981). Focal cerebral ischemia in the rat: Description of technique and early neuropathological consequences following middel cerebral artery occlusion. J Cereb Blood Flow Metab, 1:53-60.

The National Institute of Neurological (1995). Disorders and Stroke rtPA Stroke Study Group Tissue plaminogen activator for acute ischemic stroke. New England Journal of Medicine, 333, 1581.

Tomita,M. (2005). Pathophysiology of brain edema. In: Kalimo, H. (Ed.), Cerebrovascular Diseases, ISN Neuropath, Basel, Switzerland, 33–46.

Traysman R.J. (2003). Animals models of focal and global cerebral ischaemia. J. ILAR, 44, 85.

van der Meer P, Voors A. A, Lipsic E, H Wiek, van Gilst and J. Dirk, van Veldhuisen (2004). Erythropoietin in cardiovascular diseases. , (25)4: 285-291.

van der Worp HB, de Haan P, Morrema E, Kalkman CJ (2005) Methodological quality of animal studies on neuroprotection in focal cerebral ischaemia. J Neurol, 252:1108–14.

Wahlgren NG, (1998). The Clomethiazole Acute Stroke Study (CLASS). Efficacy results in a subgroup of 545 patients with total anterior circulation syndrome. Stroke, 29: 287.

Weih, M., Kallenberg, K., Bergk, A., Dirnagl, U., Harms, L., Wernecke, K.D., and Einhaupl, K.M. (1999). Attenuated stroke severity after prodromal TIA: A role for ischemic tolerance in the brain? Stroke, 30:1851– 1854.

Wijdicks EF, Diringer MN (1998). Middle cerebral artery territory infarction and early brain swelling: progression and effect of age on outcome. Mayo Clin Proc, 73: 829-836.

Zea Longa E, Weinstein PR, Carlson S, Cummings R (1989). Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke, 20:84-91.

Datos del autor.

Resumen Curricular del Autor principal

Nombre y Apellidos

Iliana María Sosa Testé

Fecha de nacimiento

23/04/1966

E-mail:

Graduado

Médico Veterinario

Fecha: 1989

Lugar: UNAH

  

Otros Títulos

Diplomada en Epizootiología (2001), Master en Prevención de enfermedades (Mención Salud Animal,2001), Tecnólogo de I Nivel del CITMA (2004), profesor Adjunto Auxiliar de la Facultad de Medicina Veterinaria de la UNAH, Cuba (2004). Profesor adjunto Titular del Instituto Superior de enseñanza pedagógica técnico profesional, (ISPETP)

Grado científico

Master en Ciencias

Fecha: 2001

Lugar: UNAH

Categoría Docente

Auxiliar adjunto,Titular adjunto

Fecha: 2004

Lugar: UNAH, ISPETP

Categoría Científica o Tecnológica

Tecnólogo de I nivel, CITMA

Fecha: 2004

Lugar: CITMA

Labor que desempeña

Directora de Aseguramiento y Control de la calidad en el Centro Nacional para la Producción de Animales de Laboratorio (CENPALAB). Presidenta de la Sociedad provincial de Animales de Laboratorio, Presidenta del Consejo Científico Veterinario del CENPALAB. Miembro del Buro Nacional del CCV de Cuba.

Líneas de Investigación que desarrolla y las tres investigaciones más importantes realizadas en los últimos 5 años.

Trabaja en la dirección de Aseguramiento y Control de la calidad del CENPALAB, ha desarrollado investigaciones en este campo, además tiene otras investigaciones en el campo de la salud animal como Epidemiología, Clínica y Evaluación de la eficacia Terapéutica de Medicamentos, es miembro de la Comisión Nacional de Ensayos clínicos veterinarios.

Es la presidenta del Consejo Científica de su centro, y miembro del Consejo Nacional de Veterinaria.

Actualmente trabaja en el tema de Doctorado sobre la evaluación preclínica de la rHu-EPO como neuroprotector en modelos e isquemia cerebral.

 

Iliana María Sosa Testé

Partes: 1, 2, 3

Partes: 1, 2, 3
 Página anterior Volver al principio del trabajoPágina siguiente