Primero se nombra el ácido que proporciona el grupo carboxilo con una terminación –il; a continuación se nombra el aminoácido que proporciona el grupo amino. Con base en las letras que codifican a los aminoácidos, la glicilalanina se puede abreviar gli-ala. En esta notación, se sobre entiende que el grupo amino está a la izquierda y el grupo carboxilo a la derecha.
Los polipéptidos se forman cuando un gran número de aminoácidos se enlazan con uniones peptídicas. Las proteínas son moléculas de polipéptidos con pesos moleculares que van desde 600 hasta más de 50 millones de uma. Las proteínas simples están compuestas por completo de aminoácios. Otras proteínas llamadas proteínas conjugadas, están formadas por proteínas simples unidas a otra clase de moléculas bioquímicas, por ejemplo, carbohidratos. Debido a que hay 20 diferentes aminoácidos en las proteínas y a que las proteínas constan de cientos de aminoácidos, el número de arreglos posibles de los aminoácidos de las proteínas es inmenso.
Estructura de las proteínas:
El arreglo, o secuencia de los aminoácidos en la cadena de una proteína, se llama estructura primaria. La estructura primaria da a las proteínas su identidad única. Un cambio en uno sólo de los aminoácidos puede alterar las características bioquímicas de la proteína. Por ejemplo, la anemia falciforme es un desorden genético que se debe al cambio de un aminoácido por otro en una cadena de la proteína hemoglobina. La cadena afectada contiene 146 aminoácidos. En una persona afectada de anemia falciforme, el sexto aminoácido es valina en lugar de ácido glutámico. Esta sola sustitución es un aminoácido que tiene una cadena lateral con un grupo alquiilo no polar, en lugar de un aminoácido con un grupo ácido como cadena lateral, altera las propiedades de solubilidad de la hemoglobina e impide el flujo normal de sangre.
Las proteínas de los organismos vivos son solamente largas cadenas flexibles con estructuras al azar. Más bien las cadenas se enrollan o estiran en formas especiales. La estructura secundaria de una proteína se refiere a cómo se orientan segmentos de la cadena de una proteína en un patrón regular.
Uno de los arreglos más importantes y comunes de la estructura secundaria es la hélice-a, propuesta primero por linus Pauling y R,B, Corey:
La hélice se mantiene en esa posición mediante interacciones puente de hidrógeno entre los enlaces N-H y los oxígenos de los grupos carbonilo cercanos. La inclinación de la hélice y el diámetro del cilindro deben ser tales que no se tensionen los ángulos de enlace y los grupos funcionales N-H y C=O de vueltas adyacentes estén en las posiciones apropiadas para formar el puente de hidrógeno. Una disposición deesta clase es posible para algunos aminoácidos a lo largo de la cadena, pero no para otros. Las grandes moléculas de proteínas pueden contener segmentos de cadena que tienen una disposición helicoidal, alternados con secciones en las cuales la cadena se ha enrollado al azar.
La forma general de una proteína, determinada por la forma en que se dobla y tuerce y por las secciones de estructura a-helicoidal se llaman estructura terciaria:
La estructura terciaria de una proteína se mantiene por muchas interacciones diferentes. Ciertos dobleces de la cadena proteínica pueden llevar a un arreglo de menor energía (mayor estabilidad) que otros patrones de doblado. Por ejemplo, una proteína globular disuelta en solución acuosa se dobla de modo que los grupos aluilo de los aminoácidos no polares se localizan en el interior de la molécula, lejos de las moléculas polares de agua. Las cadenas laterales ácidas y básicas más polares se colocan hacia la solución, donde pueden interactuar con las moléculas de agua por medio de interacciones ion-dipolo, dipolo-dipolo, o puentes de hidrógeno.
PRECIPITACIÓN DE LAS PROTEÍNAS:
Las proteínas, debido al gran tamaño de sus moléculas, forman con el agua soluciones coloidales. Estas soluciones pueden precipitar con formación de coágulos al ser calentadas a temperaturas superiores a los 70:C o al ser tratadas con soluciones salinas, ácidos, alcohol, etc. La coagulación de las proteínas es un proceso irreversible y se debe a su desnaturalización por los agentes indicados, que al actuar sobre la proteina la desordenan por la destrucción de su estructura terciaria y cuaternaria.
Técnica:
1- Ensayo de Biuret:
Colocar 1ml de solución de helado de vainilla en polvo en un tubo de ensayo. Agregar 20 gotas de NaOH (ac) y 1 o 2 gotas de CuSO4
Observar.
El ensayo de biuret detecta la presencia de proteínas. Si la reacción es positiva, se obtiene un color violeta.
En este casó, se observó que la reacción dio positiva. El reactivo detectó la caseína.
Fundamento teórico del reactivo de Biuret:
El Reactivo de Biuret es aquel que detecta la presencia de proteínas, péptidos cortos y otros compuestos con dos o más enlaces peptídicos en sustancias de composición desconocida.
Está hecho de hidróxido potásico (KOH) o hidróxido de sodio (NaOH) y sulfato cúprico (CuSO4), junto con tartrato de sodio y potasio (KNaC4O6·4H2O). El reactivo, de color azul, cambia a violeta en presencia de proteínas, y vira a rosa cuando se combina con polipéptidos de cadena corta. El Hidróxido no participa en la reacción, pero proporciona el medio alcalino necesario para que tenga lugar.
Se usa normalmente en el ensayo de Biuret, un método colorimétrico que permite determinar la concentración de proteínas de una muestra mediante espectroscopía ultravioleta-visible a una longitud de onda de 540 nm (para detectar el ión Cu2+).
Positivo:
2- Reacción Xantoproteica:
Colocar 1ml de solución de helado de vainilla en polvo en un tubo de ensayo. Agregar 2 o 3 gotas de HNO3 (ac). Calentar.
Observar.
Mediante esta prueba, se obtiene resultado positivo ante la presencia de aquellas proteínas con aminoácidos portadores de grupos aromáticos (como la caseína).
Dio color amarillo (positivo) evidenciando nuevamente la presencia de la caseína que es portadora de anillo bencénico.
Fundamento teórico de la reacción xantoproteica:
La reacción xantoproteica es la nitración del anillo bencénico. Es un método que se puede utilizar para determinar la cantidad de proteína soluble en una solución, empleando ácido nítrico concentrado. La prueba da resultado positivo en aquellas proteínas con aminoácidos portadores de grupos aromáticos (bencénicos). Es debida a la formación de un compuesto aromático nitrado de color amarillo, cuando las proteínas son tratadas con ácido nítrico concentrado. Si una vez realizada la prueba se neutraliza con un álcali, se torna color amarillo oscuro.
3- Reacción de Millón:
Colocar 1 ml de solución de helado de vainilla en polvo en un tubo de ensayo. Agregar 1 o 2 gotas de reactivo de Millón. Calentar.
Observar.
Esta reacción reconoce residuos fenólicos, o sea aquellas proteínas que contengan tirosina. El resultado es color rojo si la prueba da positiva.
En este caso, la reacción dio positiva, ante la presencia de la tirosina en la caseína.
La tirosina es uno de los 20 aminoácidos que forman las proteínas. Se clasifica como un aminoácido no esencial en los mamíferos ya que su síntesis se produce a partir de la hidroxilación de otro aminoácido: la fenilalanina. Esto se considera así siempre y cuando la dieta de los mamíferos contenga un aporte adecuado de fenilalanina. Por tanto el aminoácido fenilalanina sí que es esencial.
La palabra tirosina proviene del griego tyros, que significa queso. Se llama así ya que este aminoácido fue descubierto por un químico alemán llamado Justus Von Liebig a partir de la proteína caseína, que se encuentra en el queso.
Fundamento teórico de la reacción de Millón:
El Reactivo de Millon se prepara disolviendo una parte de mercurio (Hg) en una parte de ácido nítrico fumante (HNO3). De esta forma, la presencia de cantidades relativamente altas de mercurio conduce a la formación de Nitrato de mercurio (I) Hg2(NO3)2 el cual en medio fuertemente ácido reacciona con el grupo -OH de la tirosina produciendo una coloración roja característica. Al finalizar la reacción, durante la cual se desprende gran cantidad de óxidos de nitrógeno, el reactivo se puede diluir con dos veces su volumen en agua y deberá ser decantada algunas horas después la solución clara sobrenadante. Se deben tomar precauciones para la correcta eliminación de los residuos de mercurio.
INVESTIGACIÓN DE GLÚCIDOS:
Glúcidos:
Los glúcidos o carbohidratos son una clase importante de sustancias que se encuentran en la naturaleza tanto en las plantas como en los animales. En realidad los carbohidratos no son hidratos de carbono: son polihidroxialdehídos y cetosas. Por ejemplo, la glucosa, el más abundante de los carbohiratos es un aldehído de seis carbonos, mientras que la fructosa, un azúcar que se encuentra en muchas frutas, es una cetona de seis carbonos:
La glucosa, que tiene como grupos funcionale tanto alcoholes como aldehído y puesto que tiene un esqueleto largo y flexible, puede reaccionar con ella misma para formar una estructura anular de seis miembros. Más aún, solamente una pequeña proporción de las moléculas de glucosa están en forma de cadena abierta en solución acuosa. Aunque el anillo se suele dibujar en forma plana, las moléculas realmente no son planas.
Durante la formación de la estructura anular de la glucosa, el grupo OH del carbono 1 puede estar del mismo lado del anillo que el grupo OH del carbono 2 (para producir la forma cíclica a de la glucosa) o en el lado opuesto (produciendo la forma cíclica ß). Otra forma de distinguir estas dos formas es resaltando que en la forma a y ß puede ser pequeña, tiene consecuencias biológicas enormes. Como veremos, este pequeño cambio en la estructura explica la gran diferencia entre el almidón y la celulosa.
La fructosa se puede ciclar para formar anillos de cinco o de seis miembros. El anillo de cinco miembros se forma cuando el grupo OH del carbono 5 reacciona con el grupo carbonilo de carbono 2:
El anillo de seis miembros resulta de la reacción entre el grupo OH del carbono 6 y el grupo carbonilo del carbono 2.
Enlace glicosídico:
Los glicósidos, oligosacáridos y polisacáridos, tienen como principio estructural común el enlace glicosídico. Si se calienta glucosa con alcohol metílico y HCl, se forma una mezcla de dos sustancias, el a- y ß-metilglucósido, que poseen la siguiente constitución:
Las sustancias de esta naturaleza reciben el nombre genérico de glicósidos; corresponden a los acetales completos de los aldehídos. Por hidrólisis, se desdoblan en sus componentes. La palabra "glicósido" representa un concepto amplio que abarca toda esta clase de sustancias. Los representantes que derivan de la glucosa reciben el nombre de glucósidos, los que derivan de la galactosa, galactósidos, etc., y el enlace que une el azúcar y el alcohol se denomina enlace glicosídico. La formación de glicósidos a partir del azúcar y el metanol por catálisis es idéntica a la de obtención de acetales a partir de los aldehídos. Es evidente que la célula viva no utiliza el alcohol clorhídrico para la formación de estas sustancias.
Existe la isomería entre el a- y ß-glucósido, que corresponde a la isomería entre la a- y ß-glucosa. No obstante mientras que en disolución ambas formas de glucosa se encuentran en equilibrio (mutarrotación), los correspondientes glucósidos no se transforman uno en otro. Este hecho resulta fácilmente comprensible si se tiene en cuenta que en los glicósidos el grupo carbonilo se encuentra bloqueado; el grupo hidroxilo en el C-1 queda inmovilizado por la presencia del radical R.
En general, los glicósidos pueden formarse con alcoholes, hidroxilos fenólicos e incluso con ácidos carboxílicos (originando los llamados "esterglicósidos"). Especialmente en los glicósidos naturales el componente alcohólico (o fenólico) se denomina aglicón (radical desprovisto de azúcar).
Además de los O-glicósidos, también se conocen los N-glicósidos,los cuales se originan por deshidratación entre el hidroxilo hemiacetálico y un HN.
Técnica:
1- Fehling:
Preparación del reactivo de fehling:
En un tubo de ensayo agregar 3 ml de solución de fehling C y 3 ml de solución de fehling T y calentar. Luego de unos minutos, la solución debe mantenerse color azul para que el reactivo esté preparado de manera correcta. De no ser así, repetir la preparación de fehling.
Una vez preparado el reactivo, agregar 1 ml de solución de helado de vainilla en polvo.
Observar.
El reactivo de fehling, reconoce la presencia de azúcares reductores. Se obtiene un precipitado naranja en reductores. Pueden ser monosacáridos como disacáridos
En este caso, el ensayo dio positivo, dada la presencia de la lactosa y la sacarosa, dos disacáridos reductores.
Fundamento teórico del reactivo de fehling:
Fehling c:
Solución acuosa de sulfato cúprico:
Feling t:
Tartrato doble de sodio y potasio
Utilizando estas sustancias, se obtiene el reactivo fehling:
Bitartrato cuprato II:
Es un ion complejo.
El fehling da positivo cuando aparece un precipitado anaranjado. Este reactivo es necesario que esté en medio básico para poder obtener el resultado positivo.
Una vez preparado el reactivo de fehling, calentamos en baño con agua a ebullición. Si no cambia su color azul, entonces es correcto su uso.
El reactivo de Fehling, también conocido como Licor de Fehling, es una disolución descubierta por el químico alemán Hermann von Fehling y que se utiliza como reactivo para la determinación de azúcares reductores. Sirve para demostrar la presencia de glucosa, así como para detectar derivados de esta tales como la sacarosa o la fructosa.
El licor de Fehling consiste en dos soluciones acuosas:
Sulfato de cobre cristalizado, 35 g; agua destilada, hasta 1.000 ml.
Sal de Seignette(Tartrato mixto de Potasio y Sodio), 150 g; solución de hidróxido de sodio al 40%, 3; agua, hasta 1.000 ml.
Ambas se guardan separadas hasta el momento de su uso para evitar la precipitación del hidróxido de cobre (II).
El ensayo con el licor de Fehling se fundamenta en el poder reductor del grupo carbonilo de un aldehído. Éste se oxida a ácido y reduce la sal de cobre (II) en medio alcalino a óxido de cobre (I), que forma un precipitado de color rojo. Un aspecto importante de esta reacción es que la forma aldehído puede detectarse fácilmente aunque exista en muy pequeña cantidad. Si un azúcar reduce el licor de Fehling a óxido de cobre (I) rojo, se dice que es un azúcar reductor.
Disacáridos importantes:
La trehalosa natural es el a a`- derivado (nombre sistemático: a-glucósido-1- a-glucósido); se presenta en las plantas y recientemente se ha identificado coo el azúcar en las sangre de los insectos.
El compuesto más importante de tipo trehalósico es la sacarosa, a-glucopiranósido-ß-fructopiranósido, denominado también azúcar de caña o azúcar de remolacha; es quizás el único producto alimenticio que se utiliza en forma cristalizada. La sacarosa está muy extendida en el reino vegetal, pero en su obtención industria sólo se emplea la caña y la remolacha azucarera. Desde el punto de vista químico, llama la atención el que la fructosa se presenta en la forma cíclica furanoide, menos estable. Por este motivo, el azúcar de caña se hidroliza fácilmente por acción de los ácidos muy diluidos en glucosa y fructosa; este proceso recibe el nombre de inversión, porque después de la hidrólisis el poder rotatorio cambia de signo (el azúcar de caña tiene un poder rotatorio de [a0]= +66o y la mezla hidrolizada de a0]= -20 o, debido a que la fructuosa es fuertemente levógira). El producto de desdoblamiento ("azúcar invertido") constituye, juntamente con la sacarosa, el principal componente de la miel.
Poder reductor:
El carácter reductor se da en un disacárido si uno de los monosacáridos que lo forman tiene su carbono anomérico (o carbonílico) libre, es decir, si este carbono no forma parte del enlace O-glucosídico.
2- Barfoed:
En un tubo de ensayo agregar 2 ml de solución de helado de vainilla en polvo y luego agregar 3 ml del reactivo de barfoed. Poner a baño de agua aproximadamente 10 minutos.
Observar.
El reactivo de barfoed, permite diferenciar entre monosacáridos y disacáridos reductores, ya que da resultado positivo (precipitado naranja) solamente en monosacáridos reductores.
En este caso, la primera reacción dio negativa, ya que el helado de vainilla en polvo, tiene sacarosa y lactosa, dos disacáridos reductores. Por lo tanto, se debe hidrolizar para obtener los monosacáridos glucosa y fructosa (de la sacarosa) y galactosa y glucosa (de la lactosa), para que entonces sí la prueba de positiva.
Hidrólisis:
Colocar en un tubo de ensayo solución de helado de vainilla en polvo. Agregar unas gotas de ácido clorhídrico, hasta asegurarse de haber obtenido un medio ácido. Calentar.
Una vez hidrolizado, la prueba dio positiva, detectando los monosacáridos.
Fundamento teórico de hidrólisis:
La hidrólisis, es una reacción química entre agua y otra sustancia, como sales. Al ser disueltas en agua, sus iones constituyentes se combinan con los iones hidronio u oxonio, H3O+ o bien con los iones hidroxilo, OH-, o ambos (puede decirse que el agua reacciona "rompiendo el compuesto"). Dichos iones proceden de la disociación o autoprotólisis del agua. Esto produce un desplazamiento del equilibrio de disociación del agua y como consecuencia se modifica el valor del pH.
Las sales de los ácidos débiles o bases débiles se hidrolizan por acción del agua, dependiendo, el grado de la reacción, de la debilidad del ácido o de la débilidad de la base. Es decir, cuanto más débil sea el ácido o la base, mayor es la hidrólisis.
Básicamente al hidrolizar un sacárido, se está rompiendo los enlaces glucosídicos.
Los polisacáridos pueden descomponerse, por hidrólisis de los enlaces glucosídicos entre residuos, en polisacáridos más pequeños, así como en disacáridos o monosacáridos.
Reactivo de Barfoed:
Diferencia monosacáridos reductores y disacáridos reductores.
El reactivo basa su capacidad en la reduccion de los iones Cu2+ presentes en una dilucion. Este reactivo contiene Cu2+ en un medio ligeramente acido y es una prueba caracteristica de monosacáridos.
3- Seliwanoff:
Colocar en un tubo de ensayo 5 gotas de solución de helado de vanilla en polvo y luego agregar 3 ml del reactivo de seliwanoff.
Observar
El reactivo de seliwanoff diferencia aldosas de cetosas, dando resultado positivo (color rojo) ante la presencia de cetosas.
La primera reacción dio negativa, ya que el helado de vainilla en polvo tiene disacáridos. Pero al realizar la prueba luego de hidrolizada la solución, dio positivo, detectando la presencia de fructosa, resultado de la hidrólisis de la sacarosa.
Fundamento teórico del reactivo de Seliwanoff:
Diferencia cetosas de aldosas.
Contiene resorcinol, que condensa con los frufurales derivados de cetosas originando un color rojo intenso. Este fenómeno es desencadenado porque las cetosas se deshidratan a mayor velocidad que las aldosas.
Cetosas:
Una cetosa es un monosacárido con un grupo cetona por molécula.
Con tres átomos de carbono, la dihidroxiacetona es la más simple de todas las cetosas, y es el único que no tiene actividad óptica. Las cetosas pueden isomerizar en aldosas cuando el grupo carbonilo se encuentra al final de la molécula. Este tipo de moléculas se denominan azúcares reducidos.
Con el fin de determinar si un compuesto pertenece al grupo de las cetosas o de las aldosas se suele llevar a cabo una reacción química denominada test de Seliwanoff.
Aldosas:
Una aldosa es un monosacárido (un glúcido simple) cuya molécula contiene un grupo aldehído, es decir, un carbonilo en el extremo de la misma. Su fórmula química general es CnH2nOn (n>=3). Los carbonos se numeran desde el grupo aldehído (el más oxidado de la molécula) hacia abajo. Con solo 3 átomos de carbono, el gliceraldehído es la más simple de todas las aldosas.
Las aldosas isomerizan a cetosas en la transformación de Lobry-de Bruyn-van Ekenstein (lectura en inglés). Las aldosas difieren de las cetosas en que tienen un grupo carbonilo al final de la cadena carbonosa, mientras que el grupo carbonilo de las cetosas lo tienen en el medio.
La representación lineal, sin embargo, no es propia de las aldosas disueltas en agua u otro solvente, ya que éstas se encuentran en su mayor parte (cerca del 99%), en su forma cíclica, donde el grupo aldehído forma un enlace hemiacetal con un grupo hidroxilo, generalmente el quinto o el sexto, con la consecuente eliminación de una molécula de agua.
La detección de aldosas en el laboratorio puede realizarse mediante el test de Seliwanoff, que si bien es para detectar cetosas, un resultado negativo indicará la presencia de aldosas en la muestra.
4- Lugol:
Colocar en un tubo de ensayo agua de yodo y agregar helado de vainilla en polvo.
Observar.
Este ensayo permite reconocer polisacáridos, particularmente el almidón, por una formación de un color violeta.
En este caso, el resultado fue negativo. La prueba fue realizada en reiteradas ocasiones, con solución acuosa de helado en polvo, con el helado en polvo directamente, pero el resultado fue siempre negativo. El helado de vainilla en polvo no contiene almidón.
Fundamento teórico del reactivo de Lugol:
El reactivo de lugol, contiene una mezcla de yodo(I2) y ioduro(I-).
La prueba del yodo una prueba química usada para determinar la presencia de carbohidratos. Una solución de yodo – diyodo disuelto en una solución acuosa de yoduro de potasio – reacciona con almidón produciendo un color púrpura profundo.
Esta reacción es el resultado de la formación de cadenas de poliyoduro a partir de la reacción del almidón con el yodo. La amilosa, el componente del almidón de cadena lineal, forma hélices donde se juntan las moléculas de yodo, formando un color azul oscuro a negro. La amilopectina, el componente del almidón de cadena ramificada, forma hélices mucho más cortas, y las moléculas de yodo son incapaces de juntarse, conduciendo a un color entre naranja y amarillo. Al romperse o hidrolizarse el almidón en unidades más pequeñas de carbohidrato, el color azul-negro desaparece. En consecuencia, esta prueba puede determinar el final de una hidrólisis, cuando ya no hay cambio de color.
Investigación de actividad óptica
Polarímetro:
el polarímetro, es un aparato que srive para detectar y medir la rotación del plano de la luz polarizada.
Consta de una fuente luminosa, dos lentes polaroid o nicol y entre ellas, un portador de la sustancia que se va a examinar (tubo) para determinar su actividad óptica. El arreglo de estas piezas es tal que la luz pasa por una de las lentes (polarizador), luego por el tubo, a continuación por la segunda lente (analizador), para finalmente llegar al ojo. Cuando el tubo está vacío, observamos que el máximo de luz alcanza el ojo cuando el arreglo de ambas lentes es tal que dejan pasar luz que vibra en el mismo plano. Si rotamos la lente más cercana al ojo, por ejemplo, observamos que la luz se amortigua y alcanza un mínimo cuando la lente está perpendicular a su posición primitiva.
Ajustamos las lentes de modo que pase el máximo de luz con el tubo vacío. (En la práctica es más fácil detectar un mínimo de luz que un máximo; el principio es el mismo). Luego colocamos en el tubo la muestra que va a ser analizada. Si la sustancia no afecta al plano de ploarización, la transmisión lumínica sigue siendo máxima y se dice que el compuesto es ópticamente inactivo. En cambio, si la sustancia desvía el plano de polarización, debe rotarse la lente más próxima al ojo para ajustarla con el nuevo plano si se quiere que la transmisión lumínica otra vez sea máxima; se dice que el compuesto es ópticamente activo. Si la rotación del plano, y por consiguiente, el giro de la lente es hacia la derecha (en el sentido de las agujas del reloj), la sustancia es dextrógira (latín: deter, derecho); si la rotación es hacia la izquierda (contraria al reloj), ella es levógira (latín: laevus, izquierdo).
No solamente podemos determinar que el compueso ha girado el plano, y el sentido del giro, sino también la magnitud de éste, la que simplemente es el número de grados en que debemos rotar la lente para ajustarla a la luz. Se emplean los símbolos + y – para indicar los giros derechos e izquierdos respectivamente.
Rotación específica:
Puesto que la rotación óptica del tipo que nos interesa es causada por moléculas individuales del compuesto activo, la magnitud de la rotación depende de cuántas moléculas intercepten la luz a su paso por el tubo.
En un tubo de 20 cm de largo, la luz se topará con el doble de moléculas que en un tubo de tan solo 10 cm, por lo que la rotación también será el doble. Si el compuesto activo se halla en solución, la cantidad de moléculas con que se encuentra la luz depende de la concentración. Para un tubo de longitud dada, la luz interceptará dos veces más moléculas en una solución de 2g por 100cm3 de solvente que en una con 1g por 100cm3 de solvente, por lo que la rotación será el doble. Si se considera la longitud del tubo y la concentración, resulta que la magnitud del giro, como también su sentido, es una característica de cada compuesto activo individual.
Se define como rotación específica al número de grados de rotación observados si se emplea un tubo de 1dm de largo y si el compuesto examnado está presenta en la cantidad de 1g cm3.
Técnica:
Determinación del "0" del aparato:
1- Colocar agua destilada en el tubo hasta la marca de 12cm.
2- Colocar el tubo en su soporte. Conectar la fuente de luz y mirar por el analizador.
3- Al deslizar el analizador suavemente se observarán campos de iluminación máximos intermedios y mínimos. El cero no necesariamente debe coincidir con luz total, puede ser visión nula (o casi nula). Una vez adoptado un criterio para el cero y registrado este valor en la escala, debe mantenerse a lo largo de todas las experiencias.
Investigación de la actividad óptica del helado de vainilla en polvo:
Colocar solución de helado de vainilla en polvo en el tubo del polarímetro hasta la marca de 12cm.
Colocar el tubo en su soporte.
Mirar por el analizador.
En este caso, se debió ver el resultado de la sacarosa que posee actividad óptica (+66,5) y de la lactosa (+55.4). sin embargo, seguramente algún componente no se logro disolver adecuadamente e interrumpió el paso de la luz polarizada, no permitiendo que se observase la actividad óptica adecuadamente con el polarímetro utilizado.
Conclusión
Se lograron realizar todas las pruebas para el debido estudio del helado de vainilla en polvo. Fueron analizados los resultados en cada uno de los casos.
Bibliografía
"Química del carbono. Tomo 1" Vila – Romano
"Química del carbono. Tomo 2" Vila – Romano
"Principios de química general" Vila – Romano
"Química. La Ciencia Central" Brown – Lemay – Bursten
Principios de Bioquímica | NELSON, COX, M. LEHNINGER
http://www.angelfire.com (http://www.angelfire.com/scifi/anarkimia/Reconocimiento%20de%20Protenas.htm)
Autor:
Ignacio Amaral Díaz
| Página siguiente |