La Fotosíntesis (página 2)

2.2.4.2 Fotofosforilación Cíclica

Solo el fotosistema I participa en la fotofosforilación cíclica, que es la reacción fotodependiente más sencilla. La vía es cíclica por que los electrones energizados que se originan en la molécula P700 del centro de reacción tarde o temprano regresan a ella. En presencia de luz, hay un flujo continuo de electrones a través de una cadena de transporte dentro del a membrana tilaciodal. Al pasar de un aceptor a otro, los electrones pierden energía, parte del a cual sirve para bombear protones de un lado a otro del a membrana. Una enzima, (sintetaza de ATP) presente en la membrana tilacoidal utiliza la energía del gradiente de protones para manufacturar el ATP. No se produce NADPH, no se escinde agua ni tampoco se genera oxigeno. Por si sola, la FOTOFOSFORILACIÓN cíclica no serviría como base para la fotosíntesis, porques e necesita NADPH parar educir CO2 carbohidratos.

Aun no se delucida la importancia de la fotofosforilación cíclica para la fotosíntesis del as plantas. Aquella ocurre en las células vegetales cuando el NADP+ es insuficiente para aceptar electrones del a ferredoxina. Los biólogos en general concuerdan en que este proceso fue empleado por bacteria santiguas para producir ATP a partir de energía lumínica. Una reacción análoga a la FOTOFOSFORILACIÓN cíclica vegetal se encuentra en algunas bacterias fotosintéticas modernas.

2.3 QUIMIÓSMOSIS: LA SÍNTESIS DE ATP

Cada miembro de la cadena de transporte de electrones, embebida en la membrana tilacoidal, puede encontrarse en estado oxidado (baja energía) o reducido (alta energía).

El electrón transferido del P680 al aceptor principal esta altamente energizado; pasa de un portador al sgte. en un aserie de reacciones redox exergónicas, y pierde parte de su energía en cada paso. Sin embrago, parte del a energía cedida por el electrón no se pierde ene l sistema; se emplea para impulsar la síntesis de ATP (que e suna reacción endergónica).

Dado que dicha síntesis (o sea, la fosforilación de ADP) está acoplada al transporte de electrones que han sido energizados por los fotones, el proceso se denomina fosforilación.

Entonces, la energía liberada de los electrones que viaja por la cadena de aceptores sirve para bombear protones desde el estroma, a través del a membrana tilaciodal, hacia el espacio interior del tilacoide. Por tanto, el bombeo de portones da por resultad ola formación de un gradiente protónico de un lado a otro del a membrana. Como los protones son iones de hidrógeno (H+), la acumulación de esto hace que el pH del espacio tilacoidal descienda aun valor aproximado de 5, mientras que ene l estroma es de alrededor de 8. Esta diferencia aproximada de 3 unidades de pH a ambos lados del a membrana tilacoidal significa que hay una diferenciad e mas de mil veces en la concentración de hidrogeniones.

El gradiente de protones tiene mucha energía libre en virtud des u estado de baja entropía. El cloroplasto convierte esa energía de forma más útil. De conformidad con los principios generales del a difusión, podría esperarse que los protones, altamente concentrados dentro del tilacoide, se difundiera hacia fuera con facilidad. Sin embargo, no pueden hacerlo porque la membrana es impermeable a ellos excepto a través de determinados conductos constituidos por una enzima llamada sintasa de ATP, una proteína transmembrana la cual forma complejos tan grandes que pueden versea l microscopio electrónico, y que se proyectan hacia el estroma. Conforme los protones se difunden a través de un complejo de sintasa de ATP, la energía libre disminuye como consecuencia de un aumento de la entropía. Cada uno de tales complejos acopla este proceso exergónico de difusión a través de un gradiente de concentración con el proceso endergónico de la fosforilación de ADP para formar ATP, el cual se libera en el estroma.

El mecanismo por el cual la fosforilación de ADP se acopla a difusión a favor de un gradiente de protones se denomina quimiósmosis. Por ser la conexión esencial entre cadenas de transporte de electrones y fosforilación de ADP, la quimiósmosis es un mecanismo básico de acoplamiento de energía en las células.

2.4 REACCIÓN LUMINOSA EN BACTERIAS VERDES Y PÚRPURAS

Las bacterias fotosintéticas verdes y púrpuras se diferencian del as cianobacterias y del os fotosintetizadores eucariotas en varios aspectos fundamentales. En particular, las bacterias verdes y púrpuras no utilizan agua como fuente de electrones ni producen O2 mediante fotosíntesis, es decir, son anoxigénicas.

Por el contrario, las cianobacterias y los fotosintetizadores eucariotas son casi siempre oxigénicas. En la reacción luminosa fotosintética del as bacterias púrpuras (también denominadas proteobacterias) no se produce NADPH directamente, mientras que las bacterias verdes pueden reducir el NADP+ directamente durante la reacción luminosa. Para sintetizar NADH y NADPH, las bacterias verdes y púrpuras deben usar dadores de electrones tales como el hidrógeno, el sulfuro de hidrógeno, el azufre elemental y compuestos orgánicos que tienen potenciales de reducción mas negativos que el agua y que, por tanto, son mas fáciles de oxidar (son mejores dadores de electrones). Por ultimo, las bacterias verdes y púrpuras poseen pigmentos fotosintéticos ligeramente diferentes, las bacterioclorofilas, muchas del as cuales tienen máximos de absorción en longitudes de onda mas largas.

Las bacterioclorofilas a y b tienen máximos en 775 y 790 nm, respectivamente. In vivo, los máximos están en 830 y 890 nm (bacterioclorofila a) y 1020 a 1040 nm (bacterioclorofila b). Este desplazamiento del os máximos de absorción a la región infrarroja adapta mejora estas bacterias a sus nichos ecológicos.

Muchas del as diferencias observadas en las bacterias verdes y púrpuras se deben a la falta del fotosistema II; no pueden usar agua como dador de electrones ene l transporte de electrones no cíclico. Sin el fotosistema II, no pueden producir O2 a partir de H2O mediante la fotosíntesis y están limitadas a la fotofosforilación cíclica. De hecho, caso todas las bacterias púrpuras y verdes del azufre son anaerobios estrictos.

Cuando se excita la clorofila P870 especial del centro de reacción, cede un electrón a la bacteriofeofitina. A continuación, los electrones fluyen a las quinonas y, a través de una cadena transportadora de electrones, de nuevo a la P870 impulsando así la síntesis de ATP.

Las bacterias verdes y púrpuras se enfrentan aun nuevo problema debido a que también requieren NADH o NADPH para la incorporación de CO2. Pueden sintetizar NADH al menos de tres formas. Si están creciendo en presencia de gas hidrógeno, que tiene un potencial de reducción mas negativo que el del NAD+, puede usar directamente el hidrógeno para sintetizar NADH. Al igual que los quimiolitótrofos, muchas bacterias púrpuras fotosintéticas utilizan ATP ola fuerza motriz de protones para invertir el flujo de electrones en una cadena transportadora de electrones y transferirlos de dadores inorgánicos u orgánicos al NAD+. Las bacterias verdes del azufre parecen realiza runa forma sencilla de flujo de electrones fotosintético no cíclico para reducir el NAD+.

Dos eventos han sido realizados por las reacciones dependientes de luz: (1) la formación de ATP, que provee energía química para la formación de azúcar, y (2) la formación de NADPH, que provee energía química, un electrón y un átomo de hidrogeno para construir azúcar. Además, algo del gas oxígeno que se forma es usado por la célula en la respiración celular. El resto se difunde fuera de la célula y en el ambiente, circundante, donde esta disponible para el uso de parte de animales y de otros organismos. Además se cree que las laminillas del estroma solo poseen el fotosistema I y que solo participan en la fotofosforilación cíclica. En las cianobacterias, las reacciones luminosas fotosintéticas también se localizan en membranas.

III. FASE OSCURA EN EL PROCESO DE LA FOTOSÍNTESIS

Es el segundo proceso de la fotosíntesis y comprende la utilización de NADPH y del ATP en una serie de reacciones que llevan a la reducción del bióxido de carbono gaseoso a carbohidratos. Como estas reacciones no dependen directamente del a luz, sino solo de un suministro de ATP y de NADPH, se les conoce como "las reacciones oscuras". Si bien la terminología reacciones "luminosas" y "oscuras" se ha aceptado ampliamente, ambos procesos son, por norma, simultáneos, con los productos del proceso dependiente de la luz que se utilizan para conducir las reacciones del proceso "oscuro".

Clásicamente, el conjunto de procesos enzimáticos de conversión del CO2 en carbohidratos se denomina proceso oscuro de la fotosíntesis, pues pueden realizarse en el laboratorio en ausencia de luz si se suministran los intermediarios que se producen en el llamado proceso luminoso, es decir, ATP y NADPH. En la practica, el llamado proceso luminoso incluye muchas etapa sen las que no hay absorción del a luz ni transferencia de excitación. Sin embargo, los procesos de transferencia electrónica hasta ferredoxina y la FOTOFOSFORILACIÓN están en tan intima asociación funcional y estructural con los de absorción de luz y transferencia de excitación en los tilacoides, que sigue siendo justificada la distinción clásica entre proceso oscuro y proceso luminoso, actuando el ATP y el NADPH como enlaces entre ambos.

Todas las etapas del a conversión fotosintética del CO2 en carbohidratos tienen lugar, normalmente, ene l estroma de cloroplastos. Básicamente, se pueden distinguir tres etapas:

• Fijación del CO2, es decir, su inclusión en algún compuesto orgánico.
• Reducción de intermediarios metabólicos.
• Reordenación de productos.

Cada etapa puede incluir subetapas de activación o empuje exergónico con ATP. En general, excepto probablemente en algunas bacterias, las etapas b) y c) son idénticas en todos los organismos fotosintéticos. En cambio, existen diversos mecanismos para la etapa a). El mecanismo mas frecuente para esta etapa fue identificado con un aserie de experimentos de Calvin, Benson y Bassham en 1949, que llevaron al descubrimiento de los distintos pasos del proceso global de conversión de CO2 en carbohidratos.

3.1 CICLO DE CALVIN-BENSON (CICLO DEL C3)

En esta se construyen azúcares a partir del dióxido de carbono, usando ATP y NADPH usados durante las reacciones dependientes de la luz. La energía en las moléculas de ATP y NADPH se usa para construir enlaces covalentes dentro de una molécula de azúcar. Los átomos de hidrogeno y los electrones (que se unen con protones para formar mas átomos de hidrogeno) dentro de las moléculas de NADPH son incorporados en la estructura de una molécula de azúcar.

El azúcar es construido por una vía bioquímica llamada el ciclo de Calvin-Benson, que se ubica dentro del fluido interior (citosol) de una bacteria fotosintetizadora o dentro del fluido interior (estroma) de un cloroplasto.

El ciclo de Calvin-Benson es una vía bioquímica que construye un azúcar de tres carbonos a partir del dióxido de carbono, átomos de hidrogeno y energía química. La vía es un ciclo en la cual la molécula que la inicia –bifosfato de ribulosa (RuBP)- es el producto final que comienza la misma vía nuevamente.

El ciclo comienza cuando el dióxido de carbono se una con el RuBP, que es una molécula de seis carbonos (la enzima que cataliza esta reacción, llamada carboxilasa del RuBP, es la proteína más abundante en la Tierra). El producto de esta unión, una molécula de seis carbonos, inmediatamente se rompe para formar dos moléculas de ácido fosfoglicérico (PGA), que es una molécula de tres carbonos. Cada PGA entonces recobra un grupo de fosfato a partir del ATP (junto con la energía que este transporta) y dos átomos de hidrogeno (junto con la energía transportada en sus electrones excitados). Estos dos átomos de hidrogeno provienen del NADPH (que proporciona un átomo de hidrogeno y un electrón, y un protón libre. Las dos moléculas de PGA son convertidas en estas reacciones en dos moléculas de fosfato de gliceraldehído (GP).

Tres moléculas de dióxido de carbono son procesadas en tres turnos del ciclo. Ellas son recobradas por tres moléculas del RuBP para formar seis moléculas de PGA. Estas moléculas, a su vez, forman seis moléculas de fosfato de gliceraldehído.

Una de las seis moléculas de fosfato de gliceraldehído es el producto de la reacción: un azúcar de tres carbonos que deja el ciclo. Las otras cinco moléculas permanecen dentro del ciclo; y se convierten en tres moléculas de de RuBP para formar otro turno en el ciclo.

El ciclo no modificado de Calvin-Benson es conocido como la vía bioquímica C3, debido a que la primera molécula estable en el ciclo (el ácido fosfoglicérico o PGA) tiene tres átomos de carbono. Algunas plantas usan una versión modificada del ciclo, llamada la vía C4, porque en ese la primera molécula estable tiene cuatro átomos de carbono.

3.1.1 Regulación Del Ciclo De Calvin

En la práctica, el ciclo de Calvin solo funciona en condiciones de iluminación, que proporcionan ATP y NADPH. El CO2 nunca suele faltar y, por tanto, no es un factor que impida el funcionamiento del ciclo. En la oscuridad disminuyen las concentraciones de ATP y NADPH en cloroplastos, pero no hasta valores despreciables ya que se producen, probablemente, por respiración y vía hexosa monofosfato (ciclo del as pentosas), respectivamente, y son necesarios para mantener un mínimo estado funcional del os cloroplastos y la célula. Seria fatal para la célula que el ciclo de Calvin continuara funcionando en la oscuridad con el ATP y NADPH disponibles, pues el proceso equivaldría aun continuo formar y degradar carbohidratos con el resultado neto de un consumo inútil de ATP. Por estos motivos, existen mecanismos reguladores específicos que impiden que el ciclo de Calvin pueda funcionar en la oscuridad.

La actividad del RuBP carboxilasa esta controlada por la luz, debido, entre otros motivos a que el enzima tiene un pH optimo ligeramente alcalino y requiere Mg2+. El enzimas e encuentra ene l estroma. Como el transporte eléctrico fotosintético activado por la luz determina una entrada de protones hacia el interior del os tilacoides, ene l estroma se produce una subida del pH que activa a la RuBP carboxilasa. Para contrarrestar la diferenciad e carga eléctrica, la entrada de protones al interior de tilacoides, estimulada por luz, va acompañada de una salida de Mg2+, que estimula en estroma la actividad RuBP carboxilasa.

Además, la forma activad de RuBP carboxilasa tiene carbamilato un residuo de lisina del centro activo del enzima. La carbamilación esta catalizada por una activas a que requiere ATP y CO2. El enzima activo carbamilado es estabilizado por Mg2+.

La actividad RuBP carboxilasa es inhibida por 2-carboxi-D-arabinitol-1-fosfato (CA1PP), compuesto que sea cumula por la noche.

Un mecanismo diferente de regulación por luz es ejercidos obre las enzimas: gliceraldehído-3-fosfato deshidrogenasa, fructuosa-1,6-difosfatasa, sedohepulosa-1,7-difosfatasa y ribulosa-5-fosfato kinasa. Todos ellos tienen en su forma activa grupos -SH de cisteína. La forma activa puede pasar a inactiva por oxidación del os grupos –SH a puente disulfuro –S-S-. Las formas inactivas de estos enzimas pasan a formas activas por reducción del os puentes disulfuro cuando se iluminan los cloroplastos. Los electrones para este proceso de activación enzimática por reducción proceden en último caso del agua. En efecto, al iluminar y funcionare l transporte el transporte electrónico fotosintético, aumenta la concentración de ferredoxina reducida que, en una reacción catalizada por el enzima ferredoxina-tiorredoxina reductasa, reduce a la tiorredoxina, la cual reduce a grupos –SH los puentes disulfuro de los enzimas a activar.

Existen al menos dos tipos de tiorredoxinas. Son proteínas de bajo peso molecular implicadas en muchos otros casos de reducción de proteínas y en la síntesis de desoxirribonucleótidos.

La inactivación en la oscuridad de estos enzima sen el ciclo de Calvin parece utilizar distintas reacciones según el enzima; en cualquier caso, su mecanismo no es tan conocido como el del a activación. Para oxidar los grupos –SH a puente disulfuro e inactivar los enzima, se podría utilizar glutatión oxidado, ácido deshidroascorbico o algún otro compuesto oxidado, suya concentración aumenta al faltare l transporte electrónico fotosintético en la oscuridad.

Existen otros mecanismos de regulación por luz, de respuesta más lenta y que implican procesos de síntesis y degradación de enzimas. Así, la luz activa la síntesis de RuBP carboxilasa, al menos estimulando la expresión del gen para la subunidad pequeña (S). También se tiene en cuenta que los mencionados efectos estequiométricos, tanto para EL ATP y NADPH como para algunos intermediarios. Así, por ejemplo, en la oscuridad disminuye la concentración de ATP, NADPH y RuBP, con l oque es menor la velocidad con que actúan los enzimas que utilizan estos sustratos.

Mas independiente del a luz, es importante el factor estequiométrico ese l CO2, que determina en muchos casos la velocidad des u asimilación por el efecto de su concentración en al actividad RuBP carboxilasa.

3.2 La Vía Del C4

Como el dióxido de carbono no es un gas muy abundante (que comprende solo el 0.03% de la atmósfera), no es fácil para las plantas obtener el que necesitan. Este problemas e complica aun mas por el hecho de que el intercambio gaseoso solo puede ocurrir a través de una superficie húmeda. Las superficies de hojas y otras partes vegetales expuestas están cubiertas con una capa impermeable que ayuda a impedir la perdida excesiva de vapor de agua. De este modo, la entrada y salida de gases se limita a poros diminutos, llamados estomas, que suelen concentrarse en las caras inferiores del as hojas (envés). Tales aberturas conducen al interior del a hoja, constituido por una capa de células que contienen cloroplastos llamada mesófilo, con muchos espacios aéreos y muy alta concertación de vapor de agua.

Los estomas se abren y cierran en respuesta a factores ambientales como contenido de agua o intensidad de la luz. En condiciones cálidas y secas, se cierran parar educir la perdida de vapor de agua. Como resultado el suministro de dióxido de carbono se reduce en gran medida. Resulta irónico el hecho de que el CO2 es potencialmente menos asequible en los momentos precisos en que se disponed e la máxima intensidad de luz solar para impulsar las reacciones fotodependientes.

Muchas especies vegetales que viven en ambientes cálidos y secos han desarrollado adaptaciones que les permiten fijar inicialmente dióxido de carbono por una de dos vías que les ayudan a minimizar la perdida de agua. Estas vías, conocidas como C4 y CAM actúan en el citosol; ambas solo preceden al ciclo de Calvin (ciclo C3), n ola sustituyen.

3.2.1 El Descubrimiento De La Vía Bioquímica C4

Los biólogos a veces se alejan del o que sucede en la naturaleza porque trabajan solo con algunos tipos de organismos que crecen fácilmente ene l laboratorio. Los primeros experimentos sobre las reacciones fotoindependientes del a fotosíntesis son un buen ejemplo de tal error. Estos experimentos se realizaron sobre algas unicelulares y espinaca en los últimos años de la década de 1940, principalmente en la Universidad de California, Berkeley. Se reportó que las algas y la espinaca usaban la misma vía bioquímica para construir azucares a partir de dióxido de carbono. Esta vi ase llamo el ciclo de Calvin-Benson en honor a sus descubridores.

Las algas y la espinaca no están estrechamente relacionadas. Las primeras son organismos unicelulares acuáticos y la segunda, un organismo multicelular terrestre. Dado que estos organismos muy diferentes tenían la misma vía bioquímica, los biólogos supusieron que todas la salgas y las plantas tienen la misma vía bioquímica. La hipótesis parecía tan razonable que nadie la cuestiono ene se momento.

Investigaciones adicionales sobre el ciclo de Calvin-Benson, sin embargo, revelaron un fenómeno peculiar: el ciclo es inhibido por el oxígeno liberado del as reacciones dependientes del a luz. Esta observación no tenia sentido: ¿por qué un producto del a primer aparte de la fotosíntesis inhibiría una reacción en l asegunda parte?.

El gas oxígeno inhibía el ciclo de Calvin-Benson especialmente cuando las condiciones son cálidas y secas. La razón radica en que las plantas cierran parcialmente las aperturas minúsculas, llamadas estomas, bajo estas condiciones para reducir la evaporación del agua. Un efecto adiciona les que muy poco dióxido de carbono puede entrare n las hojas y muy poco gas oxígeno puede salir. La concentración de dióxido de carbono disminuye y la concentración de gas oxígeno aumenta.

Cuando el oxígeno llega a ser más abundante que el dióxido de carbono dentro del cloroplasto, bloque ala enzima que normalmente une el dióxido de carbono con RuBP. El oxígeno entra, en lugar del dióxido de carbono, al ciclo de Calvin-Benson, el ciclo se cierra y la síntesis de azúcar se detiene.

Si todas las plantas tienen el ciclo de Calvin-Benson y si el gas oxigeno inhibe el ciclo, ¿Cómo sintetizan las plantase l azúcar mientras sus estomas están cerrados? ¿Cómo, por ejemplo, crece el maíz tan rápidamente durante los veranos secos y calientes?.

Algunos investigadores sugirieron que quizás las plantas en los climas secos y calientes no usan el ciclo de Calvin-Benson. Cuestionaron la hipótesis de que todas las plantas y la salgas usan el ciclo y comenzaron a busca runa vía bioquímica diferente: una que no fuera inhibida por el gas oxígeno. Tal vía fue encontrada por en la década de 1960 por M. D. Hatch en Australia y C. R. Slack en Inglaterra. Ellos descubrieron que la cañad e azúcar, un aplanta que crece en climas secos y calientes, fija carbono (es decir, une el dióxido de carbono con una molécula orgánica) de una forma diferente del a fijación de carbono e nalgas y espinacas.

La vía de Hatch-Slack evita la inhibición del oxígeno al fijare l carbono en las células del a hoja que no capturan la energía lumínica, no desarrollando así altas concentraciones de oxígeno. Además, la vía de Hatch-Slack usa una enzima diferente para obtener dióxido de carbono y unirlo al RuBP. Esta enzima se une únicamente con el dióxido de carbono, aunque sea mínima su cantidad en l ahoja; y no se une con el gas oxígeno. El dióxido de carbono fijado en las células no fotosintetizadoras se bombea en cantidades masivas a las células fotosintetizadoras, donde monopoliza la enzima que la une con el RuBP. Por consiguiente, el oxígeno, en vez del dióxido de carbono, se une al RuBP y el ciclo de Calvin-Benson se activa rápidamente, aunque el resto estuviera prácticamente cerrado.

Estas dos maneras de recobrare l dióxido de carbono son conocidas como las vías C3 y C4. En la vía C3, la primera molécula estable (ácido fosfoglicérico) después del a fijación del carbono tiene tres átomos de carbono. La mayoría del as plantas usan esta vía.

En la vía C4, la primera molécula estable tiene cuatro átomos de carbono. Muchas plantas en los climas secos y calientes usan esta vía (una tercer amanera de fijar carbono, conocida como metabolismo ácido crasuláceo (CAM), se ha descubierto en cactus yo tras plantas que viven en desiertos. Es muy similar a la vía C4, pero el CAM del as plantas reduce la perdida de agua al abrir sus estomas únicamente en l anoche.

La vía C4, es particularmente común el pastos, una categoría de plantas de incluyen el maíz y la cañad e azúcar. La ventaja del a vía C4 en los climas secos y cálidos es que permite a l aplanta conservare l agua al cerrar parcialmente sus estomas mientras se construye el azúcar.

3.2.2 Descripción Y Procesos En La Vía Del C4

Las plantas C4, fijan CO2 en un compuesto de cuatro carbonos, oxalacetato, antes del ciclo de Calvin (vía C3); además, se realiza en células diferentes.

La anatomía foliar suele ser característica en las plantas C4. Además de tener células de mesófilo, poseen notables células de la vaina del haz, fotosintéticas, dispuesta sen posición estrecha y que forman vainas alrededor de las nervaduras o venaciones (venas) del a hoja. Las células mesofílicas de las plantas C4 están estrechamente asociadas a las vainas del haz. La vía C4 ocurre en las células mesofilicas, en tanto que el ciclo de Calvin se realiza en las células mesofilicas, en tanto que el ciclo de Calvin se realiza en las células del a vaina del haz.

En componente clave en la vía del C4 es una notable enzima con enorme afinidad por el dióxido de carbono, el cual se une de manera eficaz aunque este se encuentre en concentraciones vestigiales. Esta enzima, la carboxilasa de PEP, cataliza la reacción por el cual el CO2 reacciona con el compuesto de tres carbonos fosfoenolpiruvato (PEP) para formar oxalacetato.

En un paso que requiere NADPH, el oxalacetato se convierte en algún otro compuesto de cuatro carbonos, por lo común malato, que pasa a los cloroplastos del as células del a vaina del haz, donde una enzima distinta cataliza su descarboxilación a piruvato (de tres carbonos) y CO2. Se forma NADPH, el cual repone el que se consumió antes.

El CO2 liberado en las células de la vaina del haz se combina con RuBP y pasa por el ciclo de Calvin de la manera normal. El piruvato que se forma en la reacción de descarboxilación regresa a la célula del mesófilo, donde reacciona con ATP para regenerar el fosfoenolpiruvato.

El cometido del a vía del C4 es capturar CO2 de manera eficiente y en ultima instancia incrementar su concentración dentro del as células de la vaina del haz; esta ultima e sunas 10 a 60 veces mayor que la observada en las células del mesófilo del as plantas que solo tienen la vía C3.

La vía C3-C4 combinada implica el gasto de 30 ATP por hexosa, en lugar del os 18 ATP usado sen ausencia del a vía C4. El gasto extra de energía vale la pena en condiciones de alta intensidad lumínica, ya que asegura una elevada concentración de CO2 en las células del a vaina del haz y les permite realizar fotosíntesis de una manera rápida. La vía C4 se aúna a la C3 en diversas especies de plantas, ya l parecer has urgido de manera independiente en varias ocasiones. Como la carboxilasa de PEP fija dióxido de carbono con gran eficacia, las plantas C4 no necesitan mantener los estomas abiertos, y de este modo toleran temperaturas e intensidades lumínicas elevadas, pierden menos agua por transpiración (evaporación) y poseen tasas de fotosíntesis y crecimiento mayores que las plantas que utilizan solo el ciclo de Calvin.

Entre las numerosas plantas de crecimiento rápido y comportamiento agresivo que utilizan el mecanismo del C4 están la cañad e azúcar, maíz y Digitaria. Si la luz solar es abundante, la producción por hectárea de estas plantas puede ser el doble o el triple del a correspondiente a las plantas de C3. Si dicha vía pudiera incorporarse en más plantas de cultivo por manipulación genética, podría incrementarse mucho la producción de alimento sen algunas partes del planeta.

Cuando la luz es abundante, la tasa de la fotosíntesis es limitada por la concentración de CO2, de modo que las plantas C4, con mayores concentraciones de CO2 en las células del a vaina del haz, tienen ventaja. Por ejemplo, el centeno de invierno, una planta C3, crece con exhuberancia en clima frío, no así la Digitaria debido a que requiere más energía para fijar dióxido de carbono.

3.3 Vía CAM

Una serie de plantas que se encuentran sobre todo en los ambientes áridos y microclimas secos reducen en gran medida la perdida de agua durante la fotosíntesis efectuando una secuencia modificada de reacciones de asimilación de carbono que comprenden la acumulación de malato en la noche.

Debido a que la secuencia de reacciones asociadas con la acumulación nocturna de este ácido fue descubierta en las Crassulaceae, una familia que comprende cactos y muchas otras plantas, tales como orquídeas y bromelias, esta secuencia ha recibido el nombre de metabolismo ácido de la crasulácea, o CAM. Las plantas CAM con importancia económica incluyen la piña y muchas plantas ornamentales.

Las plantas CAM toman el CO2 dentro de las células mesofilicas a través de los estomas abiertos por la noche, debido a que la pérdida de agua a través de los estomas es mucho menor a temperaturas más frías de la noche que durante el día. El CO2 es fijado por la reacción de la carboxilasa de PEP, y el oxalacetato producido es reducido a malato el cual es entonces translocado dentro de la vacuola. El transporte de malato dentro de la vacuola es necesario para mantener un pH cercano al neutro en el citosol, ya que concentración celular de este es ácido puede llegar a ser de 0.2 M hacia el fin de la noche.

Las vacuolas de las plantas con CAM ocupan por lo general >90% del volumen total de la célula. Durante el periodo de luz sgte., cuando sea ha formado ATP y NADPH por la fotosíntesis, el malato es liberado de la vacuola y descarboxilado. Así, el gran conjunto de malato que es acumulado durante la noche suministra el CO2 para la asimilación del carbono durante el día. Durante la descarboxilación del malato, los estomas de la hoja están cerrados en forma apretada, de modo que no pueda escapar dela hoja, nada de agua ni del CO2. En esta forma el CO2 celular puede ser mucho más alto que el nivel del CO2 atmosférico. Como en las plantas de C4, la concentración interna superior de CO2 reduce mucho la fotorrespiración.

De hecho, el CAM es análogo al metabolismo de C4 en que la vía convencional de C3 es precedida por una secuencia de reacciones que comprende la formación de ácidos de C4, catalizados por el carboxilasa del PEP. También, las tres vías alternas de descarboxilación son las mismas en el CAM que en el de C4. El CAM y el metabolismo de C4 difieren, sin embargo, en que la vía de C4 requiere la separación espacial de las fases de carboxilación y de descarboxilación del ciclo entre las células mesofílicas y las de los haces de la cubierta, mientras que en CAM, esas etapas tienen lugar en las células mesófilas, y comprenden la separación temporal de estas fases dentro de un ciclo de día y noche.

Como en la vía de C4, el carboxilasa de PEP cataliza la reacción de bicarbonato y fosfoenolpiruvato para producir oxaloacetato, el cual es reducido al malato. En las plantas con CAM, sin embargo, esta reacción se efectúa solo durante la noche. El fosfoenolpiruvato necesario para la formación de malato proviene del almidón el cual es convertido por vía glucolítica en fosfoenolpiruvato. Durante el día, el fosfoenolpiruvato que se forma durante la descarboxilación de malato (ya sea directamente por carboxicinasa de PEP o a través de la vía de la enzima málica y la piruvato fosfato dicinasa) es convertido en almidón por gluconeogénesis y se almacena en el cloroplasto. Así, en CAM, no solo hay cambios grandes de día o de noche o durante ambos periodos en el conjunto de malato, sino también en la reserva de almidón.

Una característica importante de la regulación en la vía de CAM es la inhibición de la carboxilasa de PEP por malato y pH bajo. Durante el día, cuando la concentración citosólica de malato es levada y el pH es bajo, la carboxilasa de PEP en efecto está inhibida. Esta inhibición es indispensable para evitar ciclar inútilmente el CO2 y el malato por la carboxilasa de PEP y para evitar la competencia entre carboxilasa de PEP y carboxilasa de RuBP (RuBisCO) por el CO2.

3.4 FOTORRESPIRACIÓN

Muchas plantas C3, incluidas algunas de importancia agrícola, como suya, trigo y papa, no generan tanto carbohidrato en la fotosíntesis como cabria esperar. Esta disminución de rendimiento es especialmente significativa durante los días de más calor del verano.

En clima cálido y seco las plantas cierran los estomas para conservar agua, una vez que esto ocurre, la fotosíntesis consume con rapidez el CO2 que queda en la hoja y produce O2, que sea cumula en los cloroplastos. Como se sabe la carboxilasa de RuBP (rubisco) es la enzima de que depende la fijación del CO2 mediante la unión de este con RuBP ene l ciclo de Calvin. El O2 compite con el CO2 para unirse al sitio activo del a rubisco. Por tanto, la concentración de oxigeno en los cloroplastos e salta y la CO2 es baja, es mas probable que la rubisco catalice la reacción de RuBP con O2 que con CO2. Cuando esto sucede algunos de los intermediarios que participan en el ciclo de Calvin se degradan en CO2 y H2O. Este procesos e llama fotorrespiración porque:

• Ocurre en presencia de luz.
• Requiere oxigeno, como la respiración aerobia.
• Como en la respiración aerobia, produce CO2 y H2O.

Sin embargo, a diferencia de lo que ocurre en el proceso mencionado, en la fotorrespiración no se produce ATP. La fotorrespiración reduce la eficacia fotosintética, ya que elimina algunos del os intermediarios que participan ene l ciclo de Calvin.

No es del todo claro porque ocurre la fotorrespiración, aunque se piensa que tal vez refleje el origen del a rubisco en tiempo santiguos cuando la concentración de dióxido de carbono era alta, y la de oxígeno, baja.

La fotorrespiración es insignificante en las plantas C4, porque la concentración de CO2 en las células del a vaina del haz (donde se encuentra la rubisco) siempre e salta. Sin embargo, muchas plantas cultivadas importantes son C3 y realizan la fotorrespiración. Esta es una razón mas por la que algunos científicos intentan transferir los genes del a vía C4 a las plantas C3 cultivadas, como soy ay trigo. Si esta transferencia genética tiene éxito, tales plantas podrán producir mucho más carbohidratos en clima cálido.

3.5 DESTINOS DE LOS PRODUCTOS

Los azucares construidos por la fotosíntesis proveen a la mayoría de las formas de vida de la energía química para el trabajo celular y esqueletos de carbono para construir otros monómeros. Los monómeros se unen para construir polímeros. Los aminoácidos son los monómeros de las proteínas; los ácidos grasos y el glicerol son los monómeros de las grasas; los nucleótidos son los monómeros del DNA y RNA.

3.5.1 Monómeros

El producto inmediato del ciclo de Calvin-Benson es el fosfato de gliceraldehído. Este azúcar de tres carbonos es el monómero fundamental. Puede usarse directamente para construir aminoácidos, ácidos grasos y otros tipos de monómeros, o puede combinarse con un segundo fosfato de gliceraldehído para formar glucosa.

3.5.1.1 Fosfato de gliceraldehído

Una pequeña cantidad del fosfato de gliceraldehído formado por la fotosíntesis se convierte en monómeros diferentes de la glucosa. Algunos de estos monómeros, tales como el glicerol y los ácidos grasos, constan de los mismos tipos de átomos –carbono, hidrogeno y oxigeno- que el fosfato de gliceraldehído y son fáciles de construir a partir de este azúcar. Otros monómeros, tales como los aminoácidos y nucleótidos, requieren la adición de otros tipos de átomos, como el nitrógeno y el azufre, al esqueleto del carbono.

Los organismos fotosintetizadores adquieren átomos de su ambiente físico. Los átomos de oxigeno y carbono de los azucares se originan del dióxido de carbono del aire (o disuelto en el agua) y los átomos de hidrogeno provienen de moléculas de agua. Otros átomos, tales como el nitrógeno, el azufre, el fósforo y el potasio, se obtienen de iones disueltos en el suelo o en el agua que los circunda. Las raíces de las plantas, por ejemplo absorben iones de amonio (NH4+), nitrato (NO3-), potasio (K+), sulfato (SO4=) y fosfato (PO4≡) del suelo.

3.5.1.2 Glucosa

La mayoría del fosfato de gliceraldehído formado por la fotosíntesis se convierte en glucosa: dos moléculas de azúcar de tres carbonos, fosfato de gliceraldehído, se unen para formar una molécula de azúcar de seis carbonos, la glucosa. La glucosa, a su vez, se utiliza para como una fuente inmediata de energía o para construir moléculas mas grandes.

Cerca de la mitad de la glucosa formada por la fotosíntesis se convierte en combustible para la respiración celular de la planta, alga o bacteria. La energía liberada de esta vía bioquímica apoya el trabajo celular, la glucosa que no es usada inmediatamente para abastecer de energía se usa para construir polímeros.

3.5.2 Polímeros

Los polímeros se construyen a partir de monómeros, los cuales son sintonizados por los organismos fotosintetizadores a partir de fosfato de gliceraldehído. Los polisacáridos, tales como la celulosa y el almidón, se construyen a partir de la glucosa; las grasas a partir del glicerol y ácidos grasos; las proteínas, a partir de los aminoácidos; y los ácidos nucleicos, a partir de los nucleótidos. Estos polímeros se usan para almacenar energía y para formar membranas, enzimas, genes y otros componentes de las células a medida que el organismo crece y se reproduce.

Solo los organismos fotosintetizadores (y pocas bacterias quimiosintetizadoras) pueden construir monómeros orgánicos a partir de materiales inorgánicos. Las otras formas de vida, tales como hongos, gusanos, gorriones, lobos y seres humanos, deben hacer uso de los monómeros sintetizados por las plantas, las algas y las bacterias fotosintetizadoras.

IV. PLASTIDIOS

4.1 CLASIFICACIÓN DE LOS PLASTIDIOS

Los plastidios son orgánulos exclusivos de células vegetales y están relacionados con procesos metabólicos primordiales, pues son capaces de sintetizar y almacenar sustancias. Se encuentran en la mayoría de las células vegetales superiores e inferiores. Hay diversos tipos de plastidios, pero todos tienen en común la existencia de una doble membrana. Pueden clasificarse según su aspecto y función en:

• Indiferenciados; que pueden ser:

1. Proplastos: se cree que son el origen de todos los demás.
2. Etioplastos: provienen de proplastos que, en vez de diferenciarse en presenciad e luz para dar cloroplastos, se diferencian en la oscuridad y dan etioplastos.

• Diferenciados; que se clasifican en:

1. Cloroplastos: son cromatóforos y fotosintéticamente activos.
2. Cromoplastos: son cromatóforos y fotosintéticamente inactivos.
3. Leucoplastos: son incoloros y fotosintéticamente inactivos; están especializado sen el almacenaje de sustancias y existen varios subtipos, según cual sea la sustancia almacenada:

• Amiloplasto (almidón)
• Oleoplastos (aceites)
• Proteinoplastos (proteínas)

Los plastidios no solo realizan fotosíntesis y almacenamiento; también se usa para el metabolismo intermedio, pues producen la mayor parte del a energía y poder reductor en formad e ATP y NADPH, necesarios para las reacciones biosintéticas de la planta. La síntesis de bases púricas y pirimídicas, así como de muchos aminoácidos y todos los ácidos grasos del aplanta, tienen lugar en los plastidios.

4.2 CLOROPLASTO

4.2.1 Características generales

Son orgánulos subcelulares verdes de unos 5 a 10 μm de diαmetro presente sen las células mesofílicas del as hojas y, en general, en las células con capacidad fotosintética. Algunas algas solo tienen un cloroplasto por célula, pero hay células de plantas superiores con centenares de cloroplastos. Típicamente, una angiosperma contiene de 15 a 20 cloroplastos por célula fotosintética (ene l parénquima clorofílico o asimilador, son muy abundantes, de 30 a 40 por célula). En general, mas del 50 por 100 de la proteína foliar se encuentra formando parte del os cloroplastos.

La forma y tamaño de los cloroplastos varía de unas plantas a otras, y son característicos de organismos eucarióticos fotosintéticos. Los organismos precariotas fotosintéticos, bacterias fotosintéticas y algas verde-azules o cianobacterias, tienen otras estructuras fotosintéticas. En cualquier caso, todo organismo capaz de realizar procesos fotosintéticos contiene en sus células un sistema laminar de doble membrana.

En el caso de organismos eucarióticos, esa estructura laminar está separada del citoplasma por una cubierta membranosa, formando l oque se llama cloroplasto. En las bacterias fotosintéticas, la estructura laminar fotosintética no parece separada del citoplasma, aunque en algunos casos parece agruparse formando estructuras discretas que reciben el nombre de cromatóforos. En las algas precarióticas o verdes azules, el sistema laminar surge del a membrana plasmática, como resultado del as ramificaciones y plegamientos de esta hacia el citoplasma.

En los vegetales inferiores los cloroplastos muestran formas muy variables: adquieren forma espira len Spirogyra, estrellada en Zygnema, en herradura en Chlamydomonas, y semicilíndricas en Ulothrix. En genera len las células vegetales superiores, los cloroplastos son ovoides. Al microscopio óptico aparecen como orgánulos verdes que, as u vez, contiene muchos orgánulos de un verde intenso (grana).

4.2.2 Estructura Microscópica Del Os Cloroplastos

En cloroplastos de plantas superiores, las estructuras laminares o lamelas se disponen en forma mas o menos paralela y extendida sen la dirección de mayor longitud del cloroplasto que suele tener la formad e plato, con un acara cóncava y otra convexa, o de elipsoide. La doble membrana de cada lamela confiere a esta una apariencia de bolsa aplastada, en la que se disponen muy próximas a las dos caras de l abolsa.

Estas bolsas o sáculos pueden tener dimensiones considerables, pero otras veces se presentan como bolsas pequeñas. Frecuentemente, ciertas regiones del as lamelas grandes y conjuntos de lamelas pequeñas se empaquetan paralelamente dando estructuras membranosas más compactas de 10 a 100 lamelas de grosor, que reciben el nombre de granos o grana.

Los gran atienen a veces apariencia cilíndrica yo tras veces menos definidas, suelen estar conectados unos con otros por las lamelas mas grandes que forman parte de ellos y su numero por cloroplastos variad e unas plantas a otras y con las condiciones fisiológicas aunque, típicamente, un cloroplasto puede tener unos 50 grana, su tamaño también variable, puede ser de unos 0,2 a 0,3 μm.

El sistema membranoso de las lamelas no esta conectado al sistema de doble membrana del a envoltura del cloroplasto adulto. Las membranas de esta son algo mas delgadas (60Å) que las de las lamelas (unos 70Å) y están separadas entre si unos 100 a 500 Å.

Las lamelas también llamadas tilacoides, encierran un pequeño volumen al que separan del resto del cloroplasto. También se localizan en los tilacoides los sistemas fotosintéticos transportadores de electrones y de formación de ATP. En el estroma se realizan, entre otros, los procesos de conversión de CO2 en carbohidratos, usando coenzimas regenerado sen las estructuras membranosas.

Normalmente los cloroplastos contienen cantidades variables de almidón. Frecuentemente los cloroplastos de mucha salgas contienen un granulo, a veces muy voluminoso, que recibe el nombre de pirenoide, que sintetiza y almacena material de reserva como almidón.

4.2.3 Envoltura De Los Cloroplastos

El sistema membranoso del a envoltura del os cloroplastos carece de clorofila pero contiene carotenoides (principalmente violoaxantina) que no participan ene l aprovechamiento fotosintético del a energía luminosa. Como los tilacoides, la envoltura del os cloroplastos es rica en sulfolípidos y galactolípidos y, en cambio, no tienen casi fosfatidilcolina. Los sistemas del os cloroplastos son netamente diferentes del os do tras estructuras subcelulares y recuerdan a los de algas verde-azules, con las que los cloroplastos parecen estar relacionados evolutivamente.

En la envoltura del os cloroplastos reside un sistema de biogénesis del que derivan todas las membranas cloroplásticas y que coexiste, en la célula vegetal, con el sistema de biogénesis de membranas derivadas del retículo endoplasmático.

La envoltura de los cloroplastos contiene quinonas y unas 75 proteínas diferentes con pesos moleculares entre 20 mil y 140 mil daltons. La membrana internad e la envuelta (pero n ola externa) presentan propiedades de permeabilidad selectiva.

4.2.4 Organización Estructural De Los Tilacoides

Los tilacoides o lamelas granales tienen composición y propiedades funcionales diferentes del os estromales (que no forman parte del os grana). La relación clorofila a/clorofila be s mucho mayor en tilacoides estromales que en tilacoides granales. Además las lamelas del estroma contiene relativamente mas factor de acoplamiento del a FOTOFOSFORILACIÓN y carboxilasa RuBP (el enzima fijador de CO2) débilmente unida, que las lamelas del os grana.

V. PIGMENTOS FOTOSINTÉTICOS

Los efectos del a luz sobre los seres vivos se deben, en primera instancia, as u absorción por moléculas componentes del os organismos.

Si una molécula absorbe luz de determinadas longitudes de onda, dentro del a zona del espectro electromagnético sensible al ojo humano, al iluminarla con luz blanca solar, solo percibiremos de ella aquella luz no absorbida, la cual confiere el color característico a ese compuesto. Así, las estructuras fotosintéticas del as plantas superiores contienen moléculas capaces, conjuntamente, de absorber luz de distintas zonas del espectro visible excepto el verde. Estas moléculas son llamadas pigmentos fotosintéticos.

5.1 ESTRUCTURA Y DISTRIBUCIÓN DE LOS PIGMENTOS FOTOSINTÉTICOS

Todas las células fotosintéticas contienen al menos un tipo de clorofila. Además, la mayor parte del as células fotosintéticas tiene carotenoides y/o ficobilinas. Estas últimas pueden rojas o azules y los carotenoides fotosintéticos son amarillos. A los carotenoides y ficobilinas se les conoce como pigmentos accesorios. En algunos organismos fotosintéticos, el color de algunos pigmentos accesorios puede enmascarare l color verde del as clorofilas, confiriendo otros colores característicos a esos organismos.

5.2 CLOROFILAS

Las clorofilas son pigmentos fotosintéticos verdes que constan de cuatro anillos pirrólicos. Estos forman un macrociclo con diversos sustituyentes laterales y un sistema conjugado de dobles enlaces. Los nitrógenos pirrólicos forman ene l centro del anillo un complejo con el catión Mg2+ quedando una estructura casi plana. En el anillo IV, que en realidad es un pirrol reducido, y a través de un enlace éster con un resto de propiónico, se encuentra unido el fitol, que es un largo brazo hidrofóbico de naturaleza isoprénica con veinte átomos de carbono. Cuando se separa el fitol por hidrólisis, la estructura resultante recibe el nombre de clorofilida. Las clorofilas presentan también un quinto anillo no pirrólico unido al anillo III.

En la actualidad se pueden distinguir por lo menos siete tipos de clorofilas: las clorofilas a, b, c, d y e, la bacterioclorofila a, bacterioclorofila b y clorofila de clorobio (bacterioviridina). Las clorofilas a y b son las mejor conocidas y las mas abundantes y se encuentran en todos los organismos autotróficos excepto en las bacterias pigmentadas.

La clorofila b esta también ausente de las cianofíceas y de las algas pardas y rojas. Normalmente se considera que la clorofila a es verde azulada, mientras que la clorofila be s amarillo verdosa. Las otras clorofilas (c, d, e) se encuentran solamente en algas y en combinación con la clorofila a, las bacterioclorofilas a y b y la bacterioviridina son los pigmentos que se encuentran en los bacterios fotosintetizadores. Entonces, todos los organismos fotosintéticos excepto las bacterias fotosintéticas, contienen clorofila a. Esta, junto con una cantidad menor de clorofila b, constituyen las clorofilas del as plantas verdes y se localizan en los tilacoides del os cloroplastos.

En lugar del a clorofila b, la salgas pardas, diatomeas y dinoflagelados contienen junto con la clorofila a el tipo de clorofila llamada c, mientras que la salgas rojas contienen la clorofila d. especies como Prochloron (relacionado con algas verde-azules o cianobacterias) contienen clorofila be n lugar de ficobilinas.

La clorofila a presenta máximos de absorción a 663 y 420 nm, y la clorofila b los tiene a 644 y 430 nm. Ninguna de ellas absorbe en el verde. La clorofila c presenta máximos de absorción en éter a 447, 579 y 627 nm; a diferencia del a clorofila a, tiene un doble enlace entre los carbonos 7 y 8 y el resto unido al carbono 7 no es propionil-fitol, sino acrilil-fitol. La clorofila d se encuentra en pequeñas cantidades, su máximo de absorción ene l rojo esta a unos 670 nm y difiere del a clorofila a en que el sustituyente del carbono 2 es –CHO.

La clorofila del a mayoría del as bacterias fotosintéticas es llamada bacterioclorofila. En general, esta es del llamado tipo a, aunque en algunas especies de Rhodopseudomonas se ha encontrado otra forma llamada b. En algunas clorobacteriáceas la clorofila a acompaña, como componente minoritario a la llamada clorofila de Chlorobium.

Los espectros de absorción del as bacterioclorofilas muestran máximos de absorción ene l rojo a mayor longitud de onda (700 y 720 nm, respectivamente, para a y b) que las clorofilas de organismos fotosintéticos oxigénicos.

La clorofila de Chlorobium, en realidad se trata de una familia de clorofilas que pueden tener diversos sustituyentes (metilo, etilo, isobutilo, n-propilo) en las posiciones 4,5 y δ. El mαximo de absorción ene l rojo lo presentan aprox. a 650 nm.

5.3 CAROTENOIDES

Son poliisopropenoides de 40 átomos de carbono. Muchos de ellos se encuentran en estructuras fotosintéticas como pigmentos accesorios. Se encuentran en la membranas tilacoides y en las del a envoltura del os cloroplastos. En este ultimo caso, no participa ene l aprovechamiento fotosintético del a energía fotoluminosa. Los carotenoides pueden ser del tipo caroteno, en cuy ocaso la molécula consta exclusivamente de carbono e hidrógeno, o pueden ser xantofilas que contienen además oxígeno.

Los principales carotenoides de cloroplastos de plantas superiores son β-caroteno, luteνna, violaxantina y neoxantina. El sistema conjugado de dobles enlaces ese l responsable del a absorción de luz en la zona del visible.

En algas eucariotas se ha encontrado una mayor variedad de carotenoides, que se ha aprovechado para estudios taxonómicos. En mucha salgas, como son las algas verdes, se encuentran los mismos carotenoides que en las platas superiores. En algunas algas rojas son, en cambio, más frecuentes α y β-carotenos, luteína y zeaxantina. Diadinoxantina es la principal xantofila de Euglenofitas. El β-caroteno esta presente es los cloroplastos de todas la salgas eucariotas y e nalgas verde-azules (o cianobacterias, precariotas oxigénicas). En esta ultima salgas abunda también equinenona y zeaxantina.

Los carotenoides fotosintéticos presentan, en general, un máximo de absorción de entre 450 y 490 nm, yo tros menores en zonas próximas, mostrando un color entre amarillo y naranja. Sirven así para utilizar fotosintéticamente energía luminosa poco absorbida por las clorofilas. Los carotenoides tienen a su vez un papel protector contra la autodestrucción del as clorofilas.

En cromoplastos no clorofílicos se pueden acumular otros carotenoides. Así, en los cromoplastos del tomate maduros e acumula el licopeno.

5.4 FICOBILINAS

Son tetrapirroles que no forman un macrociclo como ocurre con las clorofilas. Se encuentran unidas covalentemente a proteínas específicas formando las llamadas biliproteínas. Solo se encuentra en los aparatos fotosintéticos de lagas rojas, algas verdes y criptofitas.

Absorben intensamente en zonas variables de entre 480 y 670 nm, captando así longitudes de onda poco utilizadas por las clorofilas. Su color intenso puede enmascarar el verde de las clorofilas presentes en el organismo fotosintético.

Básicamente se consideran dos tipos: ficoeritrinas (rojas) y las ficocianinas (azules). En una misma especie suelen estar presentes los dos tipos de ficobiliproteínas, aunque en general predomina uno de ellos. La unión covalente a las proteínas se realiza por enlaces éster con residuos des erina y mediante puentes de azufre con cisteína cuyo grupo –SH se adiciona aun doble enlace del pigmento. Como ocurre con otros pigmentos fotosintéticos, las ficobilinas presentan un sistema conjugado de dobles enlaces, y la excitación de sus electrones es responsable del a absorción de luz del espectro visible y su utilización fotosintética.

APÉNDICE

CUADRO 01: DIVERSIDAD DE ORGANISMOS FOTOSINTÉTICOS

CUADRO O2: PROPIEDADES DE LOS SISTEMAS FOTOSINTÉTICOS MICROBIANOS

CUADRO 03: COMPARACIÓN ENTRE FOTOSÍNTESIS Y RESPIRACIÓN AEROBIA

CUADRO 04: COMPARACIÓN DE LA FOSFORILACIÓN NO CÍCLICA Y LA CÍCLICA

CUADRO 05: COMPARACIÓN DE LOS DOS FOTOSISTEMAS

CUADRO 06: REACCIONES DEPENDIENTES DE LA LUZ: ENERGÍA ABSORBIDA Y PRODUCCIÓN

CUADRO 07: LAS REACCIONES INDEPENDIENTES DE LA LUZ: SUBSTANCIAS QUE ENTRA NY PRODUCTOS QUE SALEN DEL CICLO DE CALVIN-BENSON.

FIGURA O1: CLOROPLASTO

FIGURA 02: MUESTRA DE CLOROPLASTO

REFERENCIAS

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HORTON, R. H. (1995). Bioquímica. México D.F. Prentice Hall. Pp. 16-2 a 16-5, 16-27 a 16-29.

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Si el viento fuera eterno… si la luz que nos acusa cada mañana fuera nuestro, la paz, el eterno café de la nostalgia, dejaria de llorar a mi costado. Vida, a veces se muere y aun se sigue sintiendo amor por el pasado.

Para Rosa Adilia, Gladys Y Liz.

Por

RÓMULO AYCACHI INGA

Bach. En Biología

CÉSAR BAILÓN GALÁN

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

Escuela Profesional De Biología

Lambayeque, 16 de julio del 2004.

Lambayeque, 16 de julio del 2004