Anticuerpos frente a Virus West Nile y otros virus transmitidos por artrópodos en la población del delta del Ebro (página 2)
Enviado por Antonio Calvete Oliva
MATERIALES Y METODOS
Se estudiaron 1037 muestras de suero de otros tantos residentes en las localidades de Amposta (353 sueros), San Jaime (188), Montells (139), Jesús y María (107), Ampolla (105), San Carlos (56), Camarles (45), La Cava (41), Aldea y Masdenverge (3), recogidas a lo largo del mes de Noviembre de 1980. La muestra incluyó individuos de ambos sexos, con edades comprendidas entre los 6 y los 90 años que se prestaron voluntariamente a la extracción de sangre tras asistir a las charlas impartidas por uno de los autores en lugares de reunión previamente anunciados. Se trató, pués, de un estudio de oportunidad destinado a comprobar la circulación de ciertos virus transmitidos por artrópodos, en el que la única consideración previa fue la selección del área geográfica a estudiar, en base a sus peculiaridades ecológicas. Todos los sueros fueron separados y congelados a -20oC hasta el momento de realizar las pruebas serológicas.
La presencia de anticuerpos frente al VWN (anti-VWN) se investigó por titulación mediante la prueba de inhibición de la hemaglutinación (IHA)13, utilizando un antígeno hemaglutinante preparado según el procedimiento de Clarke y Casals13 a partir de la cepa Ef101. Los sueros se titularon desde la dilución 1/20 por dilución doble seriada hasta la 1/640. En casos seleccionados, se investigó la presencia de anticuerpos anti-VWN de la clase IgM (anti-VWN IgM) realizando la prueba de IHA sobre las fracciones resultantes de la ultracentrifugación de las muestras en gradientes de sacarosa, según un procedimiento descrito y validado previamente14.
Paralelamente, se investigó en todas las muestras la presencia de anticuerpos IHA frente a los siguientes virus: Sindbis (VSB) (Eg AR 339); Chikungunya (VCG) (Ross); Semliki Forest (VSF) (aislado original); Encefalitis transmitida por garrapatas (VTBE) (Stillerova); Banzi (VBN) (H336); Ntaya (VNY) (aislado original); Zika (VZK) (aislado original); Wesselsbron (VWS) (N177); Dengue 1 y 2 (VDG1, VDG2) (aislados originales); Fiebre amarilla (VFA) (aislado original); y Bunyamwera (VBY) (aislado original). Los tres primeros pertenecen a los Togaviridae, Alfavirus, los ocho siguientes a los Flaviviridae y el último a los Bunyaviridae. La preparación de los antígenos y las pruebas de IHA se realizaron según los mismos procedimientos aplicados al VWN.
RESULTADOS
Los resultados globales del estudio se recogen en la tabla 1, que resume las prevalencias de anticuerpos obtenidas para las distintas familias de virus estudiadas y en cada una de las localidades en las que se obtuvieron muestras. Dado que entre algunos Alfavirus y algunos Flaviviridae pueden producirse reacciones cruzadas en las pruebas de IHA, sólo se contabilizaron como positivos aquellos sueros que reaccionaron a título igual o superor a 20, con uno o más virus de la misma familia. En conjunto, un 8% de las muestras reaccionaron frente a antígenos de Flaviviridae y un 4% lo hicieron frente a antígenos de Alfavirus, siendo excepcional la reactividad frente a Bunyaviridae (4 muestras). Las prevalencias fueron muy dispares en los distintos núcleos de población estudiados, destacando los altos porcentajes de muestras reactivas frente a antígenos de Flaviviridae encontrados en las localidades de Ampolla (31/105, 29.7%) Montells (23/139, 16.5%) y San Jaime (25/188, 13.2%) y los correspondientes a Alfavirus en esta última localidad (12.7%). En contraste y con la excepción de una, las numerosas muestras recogidas en la ciudad de Amposta fueron negativas para todos los antígenos probados.
Tabla 1. Reactividad en la prueba de IHA obtenida en 1037 sueros tomados en la región del Delta del Ebro al enfrentarlos a antígenos preparados a partir de cepas de distintos virus pertenecientes al género Alfavirus y a las familias Flaviviridae y Bunyaviridae
a | Muestras reactivas frente a | % total reactivas | ||||||
Alfavirus | Flaviviridae | Bunyaviridae | ||||||
Localidad | Estudiadas | + | % | + | % | + | % | |
Amposta | 353 | 0 | – | 1 | 0.2 | 0 | – | 0.2 |
Aldea | 1 | 0 | – | 0 | – | 0 | – | – |
Camarles | 45 | 0 | – | 0 | – | 0 | – | – |
San Carlos | 56 | 0 | – | 1 | 1.7 | 0 | – | 1.7 |
Ampolla | 105 | 6 | 5.7 | 31 | 29.7 | 1 | 0.9 | 36.1 |
Jesús y María | 107 | 9 | 8.4 | 2 | 1.8 | 0 | – | 10.2 |
La Cava | 41 | 0 | – | 0 | – | 0 | – | – |
San Jaime | 188 | 24 | 12.7 | 25 | 13.2 | 2 | 1.0 | 27.1 |
Montells | 139 | 4 | 2.8 | 23 | 16.5 | 1 | 0.7 | 20.1 |
Masdenverge | 2 | 0 | – | 0 | – | 0 | – | – |
TOTAL | 1037 | 43 | 4.1 | 83 | 8.0 | 4 | 0.3 | 12.5 |
La tabla 2 resume los títulos de anticuerpos obtenidos en las muestras reactivas para cada uno de los Flaviviridae y los Alfavirus ensayados. Se obtuvieron títulos IHA iguales o superiores a 160 en porcentajes mayores del 25% del total de muestras reactivas para el Alfavirus VSF (11/32, 34.0%) y los Flaviviridae VWN (31/96, 32.3%) y VFA (16/58, 27.5%).
Tabla 2. Niveles de reactividad en IHA observados en las muestras positivas en los ensayos de IHA
Muestras reactivas frente a (%) | |||||||||||||
a | Alfavirus | Flaviviridae | Bunyaviridae | ||||||||||
Título IHA | VSB | VCG | VSF | VWN | VTBE | VBN | VNY | VZK | VWS | VDG1 | VDG2 | VFA | VBY |
20-80 | 29 (87.9) | 42 (100) | 21 (66.0) | 65 (67.7) | 42 (97.7) | 27 (84.4) | 15 (100) | 44 (100) | 44 (89.8) | 23 (88.5) | 11 (91.7) | 42 (72.5) | 2 |
160-640 | 4 (12.1) | 0 | 11 (34.0) | 31 (32.3) | 1 (2.3) | 5 (15.6) | 0 | 0 | 5 (10.2) | 3 (11.5) | 1 (8.3) | 16 (27.5) | 2 |
TOTAL | 33 (100) | 42 (100) | 32 (100) | 96 (100) | 43 (100) | 32 (100) | 15 (100) | 44 (100) | 49 (100) | 26 (100) | 12 (100) | 58 (100) | 4 |
VSB: Virus Sindbis; VCG: Virus Chikungunya; VSF: Virus Semliki Forest; VWN: Virus West Nile; VTBE: Virus de la Encefalitis transmitida por garrapatas; VBN: Virus Banzi; VNY: Virus Ntaya; VZK: Virus Zika; VWS: Virus Wesselsbron; VDG1-VDG2: Virus Dengue 1 y 2; VFA: Virus de la Fiebre amarilla; VBY: Virus Bunyamwera |
A la vista de las prevalencias obtenidas, se estudió la presencia de IgM específica frente a los Flaviviridae en muestras seleccionadas entre las obtenidas en la localidad de Montells. Sólo se obtuvieron algunos resultados positivos, siempre a muy bajo título, para el antígeno de VWN.
DISCUSION
Los datos sobre la presencia de virus transmitidos por artrópodos en España son aún muy escasos, si bien la situación de estos virus en la Península Ibérica se conoce algo mejor merced a los estudios realizados en Portugal12, donde se han conseguido aislamientos de VWN en mosquitos del género Anopheles15 y de los ortomixovirus Dhori y Thogoto16,17 y el bunyavirus Palma18 en garrapatas. Además, se han detectado anticuerpos en sueros de animales y humanos frente a una larga lista de virus, incluyendo VWN, VSB, VCG y VTBE12. En España, se han encontrado prevalencias altas de anticuerpos frente a VWN a alto título en los estudios realizados en Valencia19, Galicia20 y los alrrededores del Coto de Doñana21 en muestras humanas. Los resultados obtenidos en Galicia hacen suponer la existencia de brotes epidémicos de infección por VWN en esa región durante los años sesenta.
En consonancia con estos datos previos, el presente trabajo pone de manifiesto la existencia de una prevalencia alta de anticuerpos anti-VWN en poblaciones humanas concretas de la región del Delta del Ebro, así como de un porcentaje apreciable de casos con altos títulos y de algunas muestras con niveles residuales de IgM específica. Tanto la frecuencia de títulos elevados de anticuerpos anti-VWN como la muy desigual distribución de la prevalencia en las distintas localidades estudiadas hablan a favor de la especificidad de los resultados y sugieren la existencia de brotes de infección por VWN en localidades concretas de la región (Ampolla, San Jaime, Montells) y en un tiempo cercano a las fechas de la toma de muestras (últimos años de la década de los 70).
El marcado neurotropismo demostrado por las cepas de VWN responsables de los brotes registrados recientemente en la cuenca mediterránea7,10 hace suponer que la circulación del VWN en la región debe traducirse en la aparición de casos de meningitis y encefalitis vírica que queden sin diagnóstico etiológico. Habida cuenta que gran parte de los casos de encefalitis de supuesta etiología vírica que se producen en España quedan sin diagnosticar, aún después de realizar estudios de laboratorio exahustivos22, creemos justificado realizar estudios específicos de diagnóstico de infección por VWN en las encefalitis agudas que se produzcan en las zonas de riesgo. Dicho diagnóstico puede realizarse fácilmente en la actualidad mediante amplificación de secuencias genómicas del VWN por la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) en muestras de líquido cefalorraquídeo (LCR) tomadas durante la fase aguda de la enfermedad9. Con respecto al resto de los virus incluídos en el estudio, cabe destacar el hallazgo de no pocas muestras reactivas a alto título en IHA frente al Alfavirus Semliki Forest (11 casos de 33 positivos) y el Flavivirus VFA (16 casos de 58 positivos) en el área estudiada. En el estudio realizado en el Coto de Doñana destacó también la frecuente detección de muestras positivas a alto título frente al Alfavirus Chikungunya. Es, por tanto, posible que ambos Alfavirus circulen en la población humana de las áreas de riesgo o que las reactividades en IHA respondan a una reacción cruzada con otro Alfavirus prevalente en la Península, antigénicamente relacionado con ellos y aún no identificado. Por su parte, parece poco probable que el VFA circule o haya circulado en la región sin originar casos conocidos de fiebre hemorrágica, por lo que hay que asumir que estas reactividades responden a reacciones cruzadas con el VWN u otro Flavivirus presente en la zona. El último brote de fiebre amarilla registrado en Europa tuvo lugar en Lisboa a mediados del siglo pasado y originó una elevada mortalidad12.
En conclusión, los resultados obtenidos en el Delta del Ebro confirman muchos de los hallazgos de los estudios previos realizados en Valencia, Galicia y Andalucía y, considerando los datos en conjunto, sugieren que el VWN circula significativamente en las poblaciones humanas asentadas en las áreas de riesgo. Así, creemos justificado realizar en dichas áreas estudios destinados a aislar cepas de VWN a partir de los reservorios animales y los vectores potenciales. El impacto que pueda tener el VWN sobre la salud de la población respondería, fundamentalmente, a las complicaciones neurológicas que se asocian a la infección y podría explorarse estudiando los casos de meningitis y encefalitis víricas que se produzcan en las áreas de riesgo mediante el uso de métodos de PCR capaces de detectar la presencia de VWN en el LCR de los pacientes. A la vista de los resultados, no se puede descartar que otros virus transmitidos por artrópodos circulen en ésta y otras zonas de riesgo del Estado Español y tengan algún impacto en Salud Pública.
AGRADECIMIENTOS
Los autores desean expresar su agradecimiento a Da Ma Teresa Feliú, de la Dirección Provincial de Salud de Tarragona, al personal de la Cooperativa Médica Arrocera de Amposta y a Da Ma Angeles Ortega, Da Margarita Sanz y Da Ma Rosa Rojas, del Centro Nacional de Microbiología, por su ayuda en la recogida de las muestras y el procesamiento del manuscrito. Así mismo, A D Fernando A Redondo, del Sector de Arbovirus del INSA, Lisboa, por su colaboración técnica en la realización de las pruebas serológicas. Por último, al Dr José M Echevarría por la revisión crítica del manuscrito.
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Alvaro Lozano (1), Armindo R Filipe (2) (1) Centro Nacional de Microbiología, Instituto de Salud Carlos III. Majadahonda, Madrid. (2) Centro de Estudos de Vectores e Doenças Infecciosas. Instituto Nacional de Saúde. Aguas de Moura. Setúbal. Portugal. Correspondencia: Alvaro Lozano. Centro Nacional de Microbiología. Majadahonda. 28220 Madrid. Tfno: 5097901; Fax: 5097966.
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