Enfermedades virosas del tomate en México (página 2)

Cuadro 5. Productos recomendados para controlar trips transmisores de la marchitez manchada.

( )=Días a la cosecha, SL=Sin límite, *Sin registro

Curly top

Curotovirus del curly top (BCTV de la familia de los geminivirus)

El curly top del tomate es una enfermedad viral, del grupo de los geminivirus, que ha seriamente impedido la producción comercial en varias partes del mundo. El virus del curly top afecta a más de 300 especies de plantas de hoja ancha. Las malezas y plantas cultivadas infectadas sirven como reservorios para el insecto vector (chicharrita) y el virus. La mostaza silvestre y muchas otras malezas son la principal fuente de la chicharrita durante la primavera. En El huisache, San Luis Potosí, se pudo constatar que una planta de la familia Compositae (Asteraceae) y el quelite son los principales hospederos de la chicharrita.

Síntomas

Los síntomas del curly top varían algo de acuerdo a la planta involucrada. En plantas de to- mate, las hojas completamente desarrolladas muestran un enrollamiento pronunciado hacia arriba (acucharamiento). Estas hojas se tornan amarillentas con venación púrpura, y el follaje se vuelve rígido y quebradizo (Foto 8). Las puntas de crecimiento detienen su desarrollo y las hojas más jóvenes se curvan y se tornan amarillas. Las plantas de tomate infectadas decaen rápidamente y mueren. Los frutos maduran prematuramente en la planta. En algunas ocasiones las raicillas se ponen café en las puntas.

Desarrollo de la enfermedad

El virus del curly top es transmitido de planta a planta solamente por la chicharrita de la remolacha, Circulifer tenellus, la cual prefiere áreas desérticas. La chicharrita no se multiplica en el tomate, sino en remolacha azucarera y en las malezas que sirven como reservorio para el virus. La chicharrita adquiere el virus cuando se alimente en el floema de las plantas enfermas. Luego toma suficientes partículas virales, en unos cuantos minutos de alimentación, para permanecer infectiva por el resto de su vida. Cuando estas chicharritas se alimentan en el floema de plantas sanas, los síntomas del curly top empiezan a aparecer en una o dos semanas y dentro de un mes la planta muere. El virus se multiplica rápidamente en una planta de tomate y dentro de un día o dos, antes que los síntomas aparezcan, el virus puede ser adquirido por las chicharritas que se están alimentando.

Las condiciones ambientales secas favorecen al insecto y a la enfermedad. Las chicharritas se multiplican más rápidamente cuando la temperatura y la intensidad luminosa son altas y los días son largos, típicos de las condiciones ambientales de verano. La reproducción comienza en las áreas desérticas a medida que el ambiente se calienta y luego emigra hacia las áreas cultivadas cuando el monte empieza a secarse. Las plantas jóvenes de tomate son particularmente susceptibles.

Foto 8. Síntomas de curly top.

La chicharrita emigra de lugares distantes y no se reproduce o permanece en los lotes del cultivo. Mientras la chicharrita emigrante sucumbe a los insecticidas, otras llegan. Para cuando el curly top es evidente en un plantío de tomate, la chicharrita tiene tiempo de haberse ido a otros cultivos o malezas las cuales ella prefiere.

Cuadro 6. Virus del Curly top

+ = puede ocurrir

• = No se sabe que ocorre o relativamente no importante

Control

El mejor control es cuando se usan variedades resistentes o tolerantes, pero éstas casi nunca son las variedades o cultivares que reúnen las características para comercialización.

• Se debe implementar un programa de de control en todo el valle diseñado para controlar la chicharrita de la remolacha asperjando anualmente el pie de los cerros o las malezas de los alrededores del cultivo donde se congregan las chicharritas.

• Una alta densidad de plantas de tomate reduce las visitas por la chicharrita. En tomates desarrollados en casas sombras o invernaderos la enfermedad no llega a ser importante, ya que el sombreado minimiza la presencia de la chicharrita.

• Las aplicaciones de insecticidas a través del sistema de riego por goteo son la mejor opción, ya que la chicharrita muere antes de transmitir el virus. Estas aplicaciones no matan a los insectos benéficos, ya que ellos no se alimentan de las plantas. Las aplicaciones al follaje no evitan la transmisión del virus, debido a que las chicharritas están llegando constantemente al cultivo.

• Las aspersiones de AgroSoapPlus en combinación con extracto de neem (XtraNeem) o extracto de ajo (XtraGarlic) dan excelentes resultados.

Cuadro 7. Insecticidas recomendados para aplicar a través del sistema de riego por goteo.

*No autorizados

Cuadro 8. Insecticidas recomendados para aspersión en el follaje.

( )=Días a la cosecha, SL=Sin límite, *Sin registro

Mosaico del Pepino

Cucumovirus del mosaico del pepino (CMV)

Grupo Cucumovirus

Síntomas

Los síntomas de la enfermedad varían dependiendo de la cepa del virus involucrada. Cuando la infección es temprana, el virus detiene el desarrollo de las plantas, dándoles apariencia arbustiva. Las hojas pueden presentar moteado verde claro o síntomas más severos en donde la lamina foliar es muy reducida y únicamente permanece la nervadura central de los foliolos. Los frutos son pequeños y con frecuencia deformes (Foto 9).

Desarrollo de la enfermedad

Los áfidos (más de 86 especies) generalmente introducen el virus del mosaico del pepino en el cultivo de tomate desde las malezas o lotes de cultivos vecinos. Las infecciones secundarias pueden ocurrir por áfidos o durante el manejo del cultivo por los trabajadores de las plantas infectadas a las plantas sanas. El CMV tiene un amplio rango de hospedantes, afectando a más de 1,100 especies pertenecientes a 100 familias, entre las cuales las Crucíferas, Solanáceas, Compuestas, Papilionáceas y Cucurbitáceas son las más representativas. El CMV se transmite por semilla, pero no en solanáceas (tomate, chile y berenjena) y cucurbitáceas (melón, pepino, calabaza y sandía) cultivadas.

Cuatro 33. Patógeno (Virus del Mosaico del pepino)

+ = puede ocurrir.= No se sabe que ocorre o relativamente no importante

Foto 9. Síntomas del virus del mosaico del pepino (CMV), mostrando hojas con lamina foliar reducida, en algunos casos permaneciendo únicamente la nervadura central de l foliolo.

Agente causal

El virus es no persistente, lo cual significa que se transmite en segundos, cuando el áfido vector se está alimentando en la planta hospedante.

Control

• Medidas sanitarias encaminadas a evitar la transmisión mecánica. La remoción de plantas, y ramas de la poda, el acceso restringido a las áreas con plantas infectadas, la sanitización de los trabajadores (principalmente manos y ropa) y de su herramienta son críticos. La inmersión de las manos y herramientas de los trabajadores en agua con detergente (10 g/litro) o leche bronca (no industrializada) antes y después de trabajar cada planta, puede reducir la transmisión del virus. Las estructuras de invernaderos, cajas de cosecha, alambres, hilos, estacas, ropa, etc., deben bañarse con agua con detergente para inactivar las partículas virales contaminantes. A la entrada de los invernaderos debe haber una llave para frotarse las manos con detergente. También, las perillas deben limpiarse frecuentemente con este producto.

• Controlar los áfidos. Se han probado insecticidas y aceites minerales, así como también acolchados plásticos reflectantes, bandas amarillas adherentes alrededor del cultivo y tiras reflectantes sobre el cultivo para controlar los áfidos; sin embargo, no se han encontrado resultados convincentes.

• Eliminación de malezas y plantas ornamentales portadoras del virus.

• Eliminar las plantas enfermas, para evitar la dispersión de virus durante el manejo del cultivo, pero después de hacer una aplicación de productos que efectivamente controle los áfidos para evitar el vuelo de estos insectos a plantas sanas.

• El control de los áfidos se lleva a cabo con los mismos insecticidas usados para mosquita blanca. Las aplicaciones de jabón (AgroSoapPlus), en combinación con extracto de neem (XtraNeem) y ajo (XtraGarlic) han dado buenos resultados, ya que el jabón mata instantáneamente y no da tiempo al insecto de volar hacia las plantas sanas en donde puede transmitir la enfermedad.

• Las aplicaciones de insecticidas (Imidacloprid o Thiametoxam) a través del sistema de riego por goteo son muy efectivas, ya que elimina a la mayor parte de la población de áfidos. Estas aplicaciones no matan a los insectos benéficos, ya que ellos no se alimentan de las plantas.

Cuadro 9. Productos recomendados para el control de áfidos

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Aspermia del Tomate

Cucumovirus de la Aspermia del Tomate (TAV)

Esta virosis se ha estado detectando últimamente tanto en cultivo de tomate en campo, como en invernaderos, se trasmite por áfidos, mecánicamente y por semilla.

Síntomas

La enfermedad se presenta como un moteado que puede ser moderado o severo dependiendo del aislamiento del virus, malformaciones de las hojas, achaparramiento de la planta, frutos deformes, pequeños y comúnmente sin semillas (Foto 10).

Epidemiología

El virus infecta un amplio rango de hospederos en muchas familias de plantas, que incluyen Solanáceas, Cannaceae, Caryophyllaceae, Chenopodiaceae, Compositae, Cucurbitáceas, Leguminosae-Papilionoideae y Liliaceae y es trasmitido en forma no persistente por muchas especies de áfidos, principalmente por Myzus persicae. Una vez presente en el cultivo de tomate en campo o en invernadero y aún sin la presencia de áfidos, el humano es el principal encargado de la diseminación de la enfermedad mediante las prácticas culturales del tomate.

Cuadro 10. Patógeno (Virus de la Aspermia del tomate).

+ = puede ocurrir,

• = No se sabe que ocorre o relativamente no importante

Foto 10. Síntomas del Virus de la Aspermia del Tomate (TAV).

Control

Utilice las mismas estrategias de control que para el Virus del Mosaico del Pepino.

• Medidas sanitarias encaminadas a evitar la transmisión mecánica. La remoción de plantas, y ramas de la poda, el acceso restringido a las áreas con plantas infectadas, la sanitización de los trabajadores (principalmente manos y ropa) y de su herramienta son críticos. La inmersión de las manos y herramientas de los trabajadores en agua con detergente (10 g/litro) o leche bronca (no industrializada) antes y después de trabajar cada planta, puede reducir la transmisión del virus. Las estructuras de invernaderos, cajas de cosecha, alambres, hilos, estacas, ropa, etc., deben bañarse con agua con detergente para inactivar las partículas virales contaminantes. A la entrada de los invernaderos debe haber una llave para frotarse las manos con detergente. También, las perillas deben limpiarse frecuentemente con este producto.

• Controlar los áfidos. Se han probado insecticidas y aceites minerales, así como también acolchados plásticos reflectantes, bandas amarillas adherentes alrededor del cultivo y tiras reflectantes sobre el cultivo para controlar los áfidos; sin embargo, no se han encontrado resultados convincentes.

• Las aplicaciones de jabón agrícola (XtraGarlic) en combinación con extracto de neem (XtraNeem) o extracto de ajo (XtraGarlic) han dado buenos resultados.

• Eliminación de malezas y plantas ornamentales portadoras del virus.

• Eliminar las plantas enfermas, pero después de una aplicación de insecticida efectivo, para evitar la dispersión durante el manejo del cultivo.

• El control de los áfidos se lleva a cabo con los mismos insecticidas usados para mosquita blanca.

Mosaico de la Alfalfa

Alfamovirus del Mosaico de la Alfalfa (AMV)

Síntomas

El follaje muestra un amarillo bronceado debido a las áreas púrpuras y amarillas en hojas jóvenes en desarrollo. Las plantas infectadas detienen su desarrollo y las hojas se curvan hacia abajo. El tallo principal al nivel del suelo tiene una coloración café oscura del floema, la cual puede ser vista raspando ligeramente la epidermis del tallo. Esta coloración puede extenderse hasta las puntas de las ramas más altas. En la médula es característico encontrar un rayado irregular de color café. Las raíces frecuentemente presentan esta misma coloración red café del floema. Dependiendo de la edad de la planta al momento de la infección, el fruto en desarrollo muestra varios grados de distorsión y manchado café interno y externo (Foto 11).

Condiciones para el desarrollo de la enfermedad

Los áfidos transmiten al virus del mosaico de la alfalfa, mientras se alimentan o prueban en las plantas de tomate. Esta enfermedad es frecuentemente encontrada cerca de campos de alfalfa o de pastura permanente. Durante el corte de la alfalfa los áfidos alados llevan los virus volando de la alfalfa a los campos de tomate de los alrededores. Generalmente, la enfermedad es encontrada más cerca de alfalfa y gradualmente va disminuyendo con la distancia. Poca o nada de diseminación secundaria ocurre dentro de un campo.

Cuadro 11. Patógeno (Virus del Mosaico de la Alfalfa)

+ = puede ocurrir, = No se sabe que ocorre o relativamente no importante

Foto 11. Virus del mosaico de la alfalfa (AMV).

Control

• Utilice las mismas estrategias de control que para el Virus del Mosaico del Pepino.

• Localizando a los campos de alfalfa o por donde no venga el viento de la alfalfa son los medios posibles para evadir la enfermedad.

• Las aspersiones para áfidos no eliminarán las infecciones primarias del tomate. Las aplicaciones de jabón agrícola (AgroSoapPlus) más extracto de neem (XtraNeem) o extracto de ajo (XtraGarlic) han dado excelentes resultados, debido a que matan instantáneamente a los áfidos. Por el contario, cuando se hacer aplicaciones de insecticidas químicos, generalmente, los áfidos se irritan y empiezan a dispersar inmediatamente los virus que portan a plantas sanas.

• Medidas sanitarias encaminadas a evitar la transmisión mecánica. La remoción de plantas, y ramas de la poda, el acceso restringido a las áreas con plantas infectadas, la sanitización de los trabajadores (principalmente manos y ropa) y de su herramienta son críticos. La inmersión de las manos y herramientas de los trabajadores en agua con detergente (10 g/litro) o leche bronca (no industrializada) antes y después de trabajar cada planta, puede reducir la transmisión del virus. Las estructuras de invernaderos, cajas de cosecha, alambres, hilos, estacas, ropa, etc., deben bañarse con agua con detergente para inactivar las partículas virales contaminantes. A la entrada de los invernaderos debe haber una llave para frotarse las manos con detergente. También, las perillas deben limpiarse frecuentemente con este producto.

• No se reportan variedades o tolerantes.

Pepino Mosaic Virus

PepMV

El Pep Moaic Virus es un virus miembro de los Potexvirus que infecta muchas especies solanáceas incluyendo al tomate, papa, tabaco, etc. Fue detectado originalmente en plantas solanáceas llamadas pepino (Solanum muricatum) en Perú en 1974. Posteriormente fue reportado en tomates de invernadero en Holanda, después en el Reino Unido y ahora tiene distribución mundial. En México lo hemos encontrado en el estado de Jalisco y Baja California; es altamente infeccioso, muy estable y perdurable en el suelo y las instalaciones.

Síntomas

Puede causar síntomas muy diversos en tomate, dependiendo de la edad de la planta al momento de la infección, de la cepa del virus, de la variedad del tomate y de las condiciones ambientales durante la infección. Los síntomas aparecen a las 2 ó 3 semanas de la infección, los cuales inician en la parte terminal de crecimiento de la planta (cabeza) tornando las hojas verde claro, más pequeñas y con filodia. En las hojas aparecen manchas angulares cloróticas o áreas verde más oscuras levantadas y distorsión de hojas. En los frutos ocurre un patrón de mosaico amarillo y rojo llamado marmoleo y puede producir una maduración desigual del fruto (Foto 12).

Desarrollo de la enfermedad

Pepino Mosaic Virus es trasmitido mecánicamente particularmente por contacto. El PepMV se trasmite más rápidamente que otros potexvirus como el Virus X de la papa o que los Tabamovirus como el TMV y el ToMV, es rápidamente trasmitido por las manos o las herramientas de los trabajadores agrícolas. El PepMV es trasmitido por semilla, sobre todo en las semillas que no han sido completamente limpiadas, porque se ha encontrado contaminado, no infectando la semilla. El PepMV es un virus muy estable y permanece de una temporada a otra en residuos vegetales en el suelo o en las instalaciones dentro de los invernaderos o campo como cajas de cosecha, hilos, estacas, etc.

Foto 12. Síntomas del Pepino mosaic virus (PepMV) en tomate. La decoloración de mosaico amarillo mostrada en el foliolo es el síntoma más notable del virus en plantas de tomate (A). Pobre calidad de frutos con descoloramiento desigual en un invernadero en Texas (B). Poto cortesia de Village Farms en Texas.

Cuadro 12. Patógeno (Pepino Mosaic Virus)

+ = puede ocurrir

• = No se sabe que ocorre o relativamente no importante

Control

El control de este virus es similar al del TMV y ToMV. Debido a que el PepMV se trasmite por contacto, las estrategias de control deben de estar enfocadas a la sanitización y medidas de bioseguridad.

La remoción de plantas, y ramas de la poda, el acceso restringido a las áreas con plantas infectadas, la sanitización de los trabajadores (principalmente manos y ropa) y de su herramienta son críticos.

La inmersión de las manos y herramientas de los trabajadores en agua con detergente (10 g/litro) o leche bronca (no industrializada) antes y después de trabajar cada planta, puede reducir la transmisión del virus. Las estructuras de invernaderos, cajas de cosecha, alambres, hilos, estacas, ropa, etc., deben bañarse con agua con detergente para inactivar las partículas virales contaminantes. El detergente y el jabón inactivan instantáneamente las partículas de los virus, siendo con mucho las mejores sustancias para desinfectar objetos y manos. A la entrada de los invernaderos debe haber una llave para frotarse las manos con detergente. También, las perillas deben limpiarse frecuentemente con este producto. Plantar en lotes en donde no se hay tenido la presencia de PepMV, TMV, ToMV o doble infección, ya que estos virus pueden sobrevivir en el suelo.

Mosaico del Tabaco y del Tomate

Tobamovirus del mosaico del tabaco y del tomate (TMV y ToMV)

Estas virosis se describen juntas, porque su sintomatología es muy parecida. Ambas enfermedades se presentan año con año en el valle de Culiacán y en algunas ocasiones han llegado a causar hasta un 10% de daño. Los dos virus se trasmiten por semilla, por las manos de los fumadores, ya que el tabaco de casi todos los cigarrillos está infectado por estos virus. Se trasmite muy fácilmente en forma mecánica en cualquier manejo de la planta, comenzando por las maniobras del trasplante, hilado, podas y cosecha.

Síntomas

Los síntomas más evidentes se presentan en el follaje con un moteado variable de verde claro a verde oscuro, yendo acompañado de enrollamiento y malformación de las hojas. Las plantas manifiestan achaparramiento y los frutos presentan estrías, costras y deformaciones. En las plantas enfermas, se observan inclusiones virales en el citoplasma de tipo amorfa y cristalina (Foto 13).

Agente causal

Las partículas virales son de forma de varilla rígida de 15 nm de diámetro y 300 nm de largo. Su punto de inactivación térmica es de 93ºC con una exposición de diez minutos. Su punto máximo de dilución es de diez y la longevidad in vitro a temperatura ambiente es de un mes; en tejidos de hojas disecadas dura un lapso mayor de un año.

Foto 13. Virus del mosaico del tabaco (TMV).

Desarrollo de la enfermedad

El mosaico del tomate es una de las enfermedades que se transmiten fácilmente en forma mecánica durante las prácticas culturales, principalmente con el manejo de plántulas en los invernaderos, en las podas y durante el hilamiento de estacones. El mosaico del tomate puede sobrevivir muchos meses fuera de una planta viva, en las herramientas, estructuras de invernaderos, el aserrín, y en el suelo; en las hojas secas como en los cigarros puede sobrevivir durante muchos años. Raramente se transmite por insectos (grillos y chapulines). El virus del mosaico del tomate puede transmitirse por semilla; sin embargo, la magnitud de las semillas con el virus en lotes contaminados normalmente es por debajo del 2 %, pero con el manejo subsiguiente de plantas todas las plantas normalmente pueden llegar a infectarse antes de la cosecha.

El rango de hospedantes del virus es muy amplio: ataca a más de 50 géneros y 3000 especies de plantas herbáceas y leñosas, como la vid, papa, chile, tomate, frijol y tabaco, entre otras.

Los indicadores de este virus son: Nicotiana glutinosa; Nicotiana tabacum var. xanthi y Phaseolus vulgaris que presentan lesiones locales.

Cuadro 13. Patógeno (Virus del mosaico del tomate)

+ = puede ocurrir

• = No se sabe que ocorre o relativamente no importante

Control

Las medidas de control son similares a las del Pepino Mosaic Virus (PepMV). El mosaico del tabaco no se controla una vez enferma la planta. Las medidas preventivas encaminadas para evitar la diseminación del virus son de vital importancia.

• Use plantas sanas.

• No fume durante las labores al cultivo.

• La remoción de plantas, y ramas de la poda, el acceso restringido a las áreas con plantas infectadas, la sanitización de los trabajadores (principalmente manos y ropa) y de su herramienta son críticos. Se recomienda frotar las manos con jabón o detergente (10g/litro de agua), antes y después del manejo de cada planta, así como también sumergir las herramientas de trabajo (cuchillos, tijeras de podas y de cosecha), hilos, alambres, estacones, etc.

• Erradicar plantas enfermas.

• Eliminar residuos de poda.

• Plantar en lotes en donde no se hay tenido la presencia de PepMV, TMV, ToMV o doble infección, ya que estos virus pueden sobrevivir en el suelo.

• En invernaderos, a la entrada debe haber una llave para frotarse las manos con detergente. También, las perillas deben limpiarse frecuentemente con este producto.

• Variedades resistentes.

Infección Dual

Infección dual con virus X de la papa (PVX)

y virus del mosaico del tabaco (TMV).

Síntomas

Los síntomas ocurren en hojas jóvenes como pequeñas manchas cafés y en los pecíolos y tallos como rayas estrechas. Las lesiones pueden combinarse para formar grandes áreas muertas y las hojas se curvan hacia abajo. Las lesiones en los frutos son pequeñas y únicamente profundizan en la piel, pero muchas corren juntas formando grandes lesiones. Estas grandes lesiones dan una apariencia grasosa mal fruto. Los frutos se vuelven ásperos y deformes (Foto 14).

Desarrollo de la enfermedad

El doble rayado ocurre solamente cuando ambos virus están presentes en una planta. Si las plantas jóvenes ya infectadas con virus del mosaico del tabaco (TMV) llegan a infectarse con Infección dual con virus X de la papa (PVX), la enfermedad resultante es la "doble infección". La severidad de los síntomas es afectada por la cepa del virus, la edad de la planta cuando es infectada y la cantidad de luz durante el período el periodo de desarrollo. Como el TMV es una de las enfermedades que se transmiten fácilmente en forma mecánica durante las prácticas culturales, principalmente con el manejo de plántulas, por los trabajadores, en los invernaderos y campo, en las podas y durante el hilamiento de estacones. Los virus de la "doble infección" pueden transmitirse por semilla y con el manejo subsiguiente de plantas todas las plantas normalmente pueden llegar a infectarse antes de la cosecha.

Cuadro 14. Patógeno (doble infección)

+ = puede ocurrir, = No se sabe que ocorre o relativamente no importante

Control

Las medidas de control son similares a las del TMV, ToMV y PepMV:

• Usar plantas sanas.

• Eliminando las plantas enfermas y las que se encuentran en las vecindades generalmente eliminarán la enfermedad.

• El paso más importante es evitar cualquier manejo de plantas de papa o tubérculos antes de trabajar tomates.

• La remoción de plantas, y ramas de la poda, el acceso restringido a las áreas con plantas infectadas, la sanitización de los trabajadores (principalmente manos y ropa) y de su herramienta son críticos.

• Se recomienda frotar las manos con jabón o detergente (10g/litro de agua), antes y después del manejo de cada planta, así como también sumergir las herramientas de trabajo (cuchillos, tijeras de podas y de cosecha), hilos, alambres, estacones, etc.; erradicar plantas enfermas y eliminar residuos de poda.

Foto 14. Síntomas de doble infección viral con el virus X de la papa y el virus del mosaico del tabaco (PVX y TMV).

• A la entrada de los invernaderos debe haber una llave para frotarse las manos con detergente. También, las perillas deben limpiarse frecuentemente con este producto.

• No fume durante las labores al cultivo

• Los tomates no deberán ser plantados cerca de cultivos de papa, ni plantados en un campo el cual tuvo papas la temporada anterior.

• Variedades resistentes/tolerantes. Las variedades resistentes al TMV generalmente no muestran reacciones severas a la "doble infección".

• Plantar en lotes en donde no se hay tenido la presencia de PepMV, TMV, ToMV o doble infección, ya que estos virus pueden sobrevivir en el suelo.

Bibliografia

AI-Musa, A. 1982. Incidence, economic importance, and control of tomato yellow leaf curl in Jordan. Plant Dis. 66: 561-563.

Anderson, C. W. 1954. Cassia tors, a leguminous host of tobacco etch virus. Plant Dis. Rep. 736-738.

Ascencio-Ibáñez, J.T., Diaz-Plaza, R, Méndez-Lozano, J, Monsalve-Fonnegra, Z.I, Argüello-Astorga, G.R. y Rivera-Bustamante, R.F. 1999. First Report of Tomato Yellow Leaf Curl Geminivirus in Yucatán, México. Plant Dis. 83:1178.

Bennet, C. W. 1971. The Curly Top Disease of Sugarbeet and Other Plants. Monogr. 7. Ameritan Phylopathological Sociely. St. Paul. MN. 81 pp.

Best, R. J. 1968. Tomato spotted wilt virus. Adv. Virus Res. 13:66-146.

Braithwaite, B. M. y Blake, C. D. 1961. Tomato yellow top vims; Its distribution, characteristics, and transmission by the aphid Macrosiphum euphorbide (Thorn)- Ausl. J, Agric. Res. 12: 1100-1107.

Broadbent, L. 1976. Epidemiology and control of tomato mosaic virus. Annu. Rev. Phytopathol. 14: 76-96.

Brown, J.K. y Idris, A.M. 2006. Introduction of the Exotic Monopartite Tomato yellow leaf curl virus into West Coast Mexico. Plant Dis. 90:1360.

Brown, J.K. y Nelson, M.R. (1988) Transmission, host range and virus-vector relationships in chino del tomate virus, a whitefly-transmitted geminivirus from Sinaloa, Mexico. Plant Disease, 72(10), 866-869.

Chagas, C. M., Vicente, M., Alba, A. P. C. y July, J. R. 1977. Solanum atropurpureum Schrank, a natural reservoir of potato virus Y (PVY). Phytopathology. Z. 90: 147-151.

Cho, J. I., Mau. R. F. L. Gonsalves. D., y Mitchell, W. C. 1986. Reservoir weed hosts of tomato spotted will virus. Plant Dis.70: 1014-1017.

Cohen, S.. y Nitzany, F. E. 1966. Transmission and host range of Lhe tomato yellow leaf curl virus. Phytopathology 56: 1127-1131.

Conover, R. A. y Fulton, R. W. 1953. Occurrence of potato Y virus on toma­toes in Florida. Plant Dis. Rep. 37: 460-462.

Crill, P., Hagedorn, D. J. y Hanson, E. W. 1970. Alfalfa mosaic, the disease ant its virus incitant. Univ. Wis. Agric. Sci. Res. Bull. 280. 40 pp.

Czosnek, H. Ber, R., Amignus, Y., Cohen, S. Navol, N. y Zamir, D. 1988. Isolation of lomalo yellow leaf curl virus, a geminivirus. Phytopathology 7S:50H-512.

de Bokx, J. A. y Huttinga, H. 1981. Potato virus Y. Descriptions of Plant Viruses, No. 242 (No. 37 rev). Commonwealth Mycologica] Institute and Association of Applied Biologists, Kew, Surrey, England. 6 pp.

Demski, J. W. 1979. The epidemiology of tobacco etch virus-infected Cassia tiblusifolia in relation to pepper. Plant Dis. Rep. 63: 647-650.

Finlay, K. W. 1953. Inheritance of sported wilt resistance in the tomato. II. Five genes controlling spotted will resistance in four tomato types. Aust. J. Biol., Sci. 6: 153-163.

Font, I.; Martínez-Culebras, P.; Jorda, M.C., Louro, D.; Vaira, A.M.; Accotto, G.P. (2002) First report of Tomato infectious chlorosis virus in Spain. Plant Disease, 86(6), p 696.

Font, M. I., A. M. Vaira, G. P. Accotto, A. Lacasa, J. Serra, J. Gomila, M. Juarez, A.I. Espino, M. C. Jorda. Amarilleos en los cultivos de tomate asociados a Tomato chlorosis virus (ToCV) y Tomato infectious chlorosis virus (TICV) en España. Bol. San.Veg. Plagas, 29: 109-121, 2003

Fletcher, J. T. 1984. Diseases of Greenhouse Plants. Longman. New York. 351pp.

Francki, R. I. B., Mossop, D. W. y Hatta, T. 1979. Cucumber mosaic virus. Descriptions of Plant Viruses, No. 213. Commonwealth Mycological Institute and Association of Applied Biologists. Kew. Surrey. England. 6 pp.

Francki, R. 1. B. y Haita, T. 1981. Tomato sported will virus. Paginas 490-512 en: Handbook of Plant Virus Infections and Comparative Diagnosis. E. Kurstak, ed. Else viet/Nonh-Holland Biomedical Press. New York.

Gonsalves, D., Provvidenti, R. y Edwards, M. C. 1982. Tomato white leaf: The relation of an apparent satellite RNA and cucumber mosaic virus. Phytopathology 72: 1533-1538.

Hassan, S., Thomas, P. E. y Mink, G.I. 1985. Tomato yellow top virus: Host range, symptomatology, transmission, and variability. Phytopathology 75: 287-291,

Hassan, S. y Thomas, P. E. 1984. Etiological distinctions between tomato yellow top virus and potato leafroll and beet western yellows viruses. Plant Dis. 68: 684-685.

Henderson, D.R. 2009. TYLCV tomato production threat. UCCE Farm Advisor, Imperial County. Western Farm Press. westernfarmpress.com/vegetables/tomato-production-0604/… Jun 4, 2009 10:43 AM

Herold, F. 1970. Tobacco etch virus in Venezuela. Plant Dis. Rep. 54: 344-345.

Hollings, M. y Huttinga, H. 1976. Tomato mosaic virus. Descriptions of Plant Viruses. No. 156. Commonwealth Mycological Institute and Association of Applied Biologists, Kew, Surrey, England. 6 pp.

Hollings, M. y Brunt, A. A. 1981. Potyviruses. Paginas 731-807 en: Hand-hook ot Plant Virus Infections and Comparative Diagnosis. E. Kurslak, en Elsevier/North-Holland Biomedical Press. New York.

Idris, A.M., Guerrero, J.C., y Brown, J.K. 2007. Two Distinct Isolates of Tomato yellow leaf curl virus Threaten Tomato Production in Arizona and Sonora, Mexico. Plant Dis. 91:910,

Idris, A.M.; Lee, S.H.; Brown, J.K. (1999) First report of Chino del tomate and pepper huasteco geminiviruses in greenhouse-grown tomato in Sonora, Mexico. Plant Disease, 83(4), p 396.

Ioannou, N. I9K7. Cultural management of tomato yellow leaf curl disease in Cyprus. Plant Pathol. 36: 367-373.

Jaspars, E. M. J. y Bos, L. 1980. Alfalfa mosaic virus. Descriptions of Plant Viruses. No. 229. Commonwealth Mycological Institute and Association of Applied Biologists, Kew, Surrey, Inglaterra. 7 pp.

Jones, J. B., Jones, J. P., Stall, R. E. and Zitter, T. A. Editores. Compendium of Tomato Diseases. APS Press 73 pp

Kaper, J. M. y Waterworth, H. E. 1981. Cucumoviruses. Pagnas 257-332 en: Handbook of Plant Virus Infections and Comparative Diagnosis. E. Kurstak, ed. Elsevier/North-Holland Biomedical Press. New York.

Kunkel. L 0. 1931. Studies on aster yellows in some new host plants. Contrib. Boyce Thompson Inst. Plant Res. 3: 85-123.

Lapidot, M. and Friedmann, M. 2002. Breeding for resistance to whitefly-transmitted geminiviruses. Ann. appl. Biol. 140:109-127.

Lustra, J. R. y LUcategui, R. C. de. 1975. Viruses affecting tomatoes in Venezuela. Phytopathol. Z. 84: 253-258.

Makkouk, K. M. y Laierroi, H. 1983. Epidemiology and control of tomato yellow leaf curl virus, Paginas 314-321 en: Plant Virus Epidemiology: The Spread and Control of Insect-Borne Viruses. R. T. Plumb y J. M. Thresh, eds. Blackwell Scientific Publications. Oxford.

Martelli, G. P. 1981. Tombus viruses. Paginas 61-90 en: Handtxtok of Plant Virus Infections and Comparative Diagnosis. E. Kursuk. ed. El sevier/North-Ho II and Biomedical Press, New York.

Martelli, G. P., Quacquarelli, A. y Russo, M. 197!. Tomato bushy stunt virus. Descriptions of Plant Viruses. No. 69. Commonwealth Mycological Institute and Association of Applied Biologists. Kew. Surrey. England. 4 pp.

Momol, M. T., Simone, G. W., Dankers, W., Sprenkel, R. K., Olson, S.M., Momol, E. A., Polston, J. E. and Hiebert, E. 1999. First report of Tomato yellow leaf curl virus in tomato in south Georgia. Plant Disease 83:487.

Pelham, J. 1966. Resistance in tomato to tobacco mosaic virus. Euphytica 15: 258-267.

Pelham, J. 1972. Strain-genotype interaction of tobacco mosaic virus in tomato. Ann. Appl. Biol. 71: 219-228.

Pilowski, M. y Cohen, S. 1974. Inheritance of resistance to tomato yellow leaf curl virus in tomatoes. Phytopathology 64:632-635.

Polston, J.E., McGovern, R.J. and Brown, L.G. 1999. Introduction of Tomato yellow leaf curl virus in Florida and implications for the spread of this and other geminiviruses of tomato. Plant Disease 83:984-988.

Polston, J. E. and Anderson, P. K. 1997. The emergence of whitefly-transmitted geminiviruses in tomato in the Western Hemisphere. Plant Dis. 81:1358-1369.

Provvidenti, R., y Hoch, H. C. 1977. Tomato leaf roll caused by the interaction of the wilty gene and tobacco mosaic virus infection. Plant Dis. Rep. 61:500-502.

Purcifull, D. E. y Hiebert, E. I9S2. Tobacco etch virus. Descriptions of Plant Viruses. No. 255. Commonwealth Mycological Institute me and Association of Applied Biologists. Kew. Surrey. England. 7 pp.

Ramírez-Villapudua, J. 1996. Influencia de las cubiertas de colores en el desarrollo de los cultivos hortícolas. Congreso de Parasitología Agrícola, Tecnológico de Monterrey, Monterrey, N.L. 1996.

Ramírez-Villapudua, J. 1996. Influencia de las cubiertas de colores en el desarrollo de los cultivos hortícolas. Fundación tecnológica de Sinaloa. Culiacán, Sinaloa, México, 19 de septiembre de 1996.

Ramírez-Villapudua, J. 1991. Enfermedades de Hortalizas (edición agotada). Universidad Autónoma de Sinaloa. Edición de 1,000 ejemplares, de 105 páginas. Culiacán, Sinaloa, México.

Ramírez-Villapudua, J. 1992. Las cubiertas flotantes y los cultivos hortícolas. Agronomía 1: 2-5.

Ramírez-Villapudua, J. 1994. Cubiertas Flotantes para el Desarrollo de Cultivos Hortícolas y control de virosis. Universidad Autónoma de Sinaloa. Edición de 1,000 ejemplares, de 43 páginas. Culiacán, Sinaloa, México. Difusión. ISBN: 968-6063-67-6.

Ramírez-Villapudua, J. 1994. Estado actual, perspectivas y manejo de la mosquita blanca biotipo "B" en el estado de Sinaloa. En Simposium Internacional Sobre Mosquita Blanca. Ed. Universidad Autónoma de Sinaloa, Secretaría de desarrollo Agropecuario del Estado de Sinaloa y Confederación de Asociaciones Agrícolas del Estado de Sinaloa, Culiacán, Sinaloa, México. Del 22 al 23 de septiembre de 1994.

Ramírez-Villapudua, J. 1996. Floating coverages for disease prevention (virosis). Agricultural Tecnologies with Plastics, International Simposium 1996, Veracruz,

Ramírez-Villapudua, J. 1996. Influencia de las cubiertas de colores en el desarrollo de los cultivos hortícolas. ExpoAgro Sinaloa 1996.

Ramírez-Villapudua, J. 1996. Influencia de las cubiertas de colores en el desarrollo de los cultivos hortícolas. CAADES, Culiacán, Sinaloa, 1996.

Ramírez-Villapudua, J. 1998. Cubiertas flotantes para incrementar rendimientos y controlar enfermedades virosas de las hortalizas. En Enfermedades de las Hostalizas. Editado por Jacobo Cruz Ortega, Raymundo García Estrada y Armando Carrillo Facio. Universidad Autónoma de Sinaloa, Culiacán, Sinaloa, Páginas 207-219. ISBN 968-7636-43-2.

Ramírez-Villapudua, J. y Sáinz-Rodríguez, R. A. 2002. Enfermedades y Plagas del Cultivo del Tomate. Agrobiológica, Culiacán, Sinaloa, México. Difusión. 65 páginas.

Ramírez-Villapudua, J., Estrada-Ramírez, J. F., y Sáinz Rodríguez, R. A. 1994. Control químico de la transmisión del virus del mosaico del tabaco (Nicotiana tabacum) durante el manejo de plantas. Inter 3: 5-12.

Ramírez-Villapudua, J. y Sáinz-Rodríguez, R.A. 1994. Manejo integrado de enfermedades en hortalizas. En Curso de Aprobación de Profesionales en el Manejo Fitosanitario de Hortalizas. Ed. Secretaría de Agricultura y Recursos Hidráulicos- Univ. A. de Sinaloa, pág. 118-122. Villa Gustavo Díaz Ordaz, Sinaloa, México. Del 10 al 14 de octubre de 1994.

Ramírez-Villapudua, J. y Sáinz-Rodríguez, R. A. 2010. Manejo Integrado de las Enfermedades del Tomate. 2da Edición, Imprenta 11 Ríos. Agrobiológica, S.A. de C.V. Culiacán, Sinaloa, México. 391 páginas.

Ramírez-Villapudua, J., López-Villapudua, J. R. y López-Villapudua, C. 1990. Enfermedades del tomate (Lycopersicon esculentum) en Yurécuaro y Thanuato, Michoacán. XVII Congreso Nacional de Fitopatología de la Sociedad Mexicana de Fitopatología, Culiacán, Sinaloa, México. Pág. 57. Investigación.

Rast, A. T. B. 1975. Variability of tobacco mosaic virus in relation to control of tomato mosaic in glasshouse tomato crops by resistance breeding and cross protection. Cent. Agric. Publ. Doc. Agric. Res. Rep. 834. 76 pp.

Schroeder, W. T., Provvidenti, R. y Robinson, R. W. 1967. Incubation temperature and virus strains important in evaluating tomato genotypes for tobacco mosaic virus reaction. Tomato Genet. Coop. 17: 47-49.

Schuster, D. and Polston, J. 1999. Whitefly management guide: Tomato yellow leaf curl virus. Citrus and Vegetable, July, A6-A7.

Simons, J. N. 1959. Potato virus Y appears in additional areas of pepper and tomato production in south Florida. Plant Dis. Rep. 40: 531-533.

Thomas, J. E. 1984, Characterization of an Australian isolate of tomato yellow top virus. Ann. Appl. Biol. 104: 79-86.

Thomas, P. E. y Martin, M. W. 1971. Apparent resistance to establishment of infection by cuily top virus in tomato breedings lines. Phyiopatholo Ev. 61: 550-551.

Thomas, P. E. y Martin, M. W. 1972. Characterization of a factor of resistance in curly top virus-resistant tomatos. Phytopathology 62: 954-958.

Thomas, P. E. y Mink, G. 1. 1979. Beet curly top virus. Destripiions of Flaw Viruses. No. 210. Commonwealth Mycologicul Inslitule and Association of Applied BiologiMs. Kov. Surrey. England. 6 pp.

Tomlinson, J. A. y Faithfull, E. M. 1984. Studies on the occurrence of tomato bushy stunt virus in English rivers. Ann. Appl. Biol. 104: 485-495.

Tomlinson, J. A. Faithfull, E. M. Fleweit. T. H. y Beards, G. 1982. Isolalion of infective tomato bushy stunt virus after passage through the alimentary tract of a man. Nature (London) 300: 637-638.

Torres-Pacheco, I.; Garzón-Tiznado, A.; Brown, J.K.; Bercerra-Flora, A.; Rivera-Bustamante, F.R. (1996) Detection and distribution of geminiviruses in Mexico and the Southern United States. Phytopathology, 86, 1186-1192.

Turina, M., Ricker, M. D., Lenzi, R., Masenga, V., and Ciuffo, M. 2007. A severe disease of tomato in the Culiacan area (Sinaloa, Mexico) is caused by a new picorna-like viral species. Plant Dis. 91:932-941.

University of California Statewide Integrated Pest Management Project. 1985. Integrated Pest Management of Tomatoes. Publ. 3274. 2nd ed. University of California, Division of Agriculture and Natural Resources, Oakland. 105 pp.

Van Regenmortel, M. H. V. y Pinck, L. 1981. Alfalfa mosaic virus. Paginas 415-421 en: Handbook of Plant Virus Infections and Comparative Diagnosis. E. Kurstak, ed. Elsevier/North-Holland Biomedical Press, Nueva York.

Zilter, T. A. Daughlrey, M. L. y Sanderson, J. P. 1989. Diseases of tomato, other vegetables, and ornamental crops: Tomato spotted will virus. Cornell Coop. Ext. Veg./Hortic. Crops Fact Sheet 735.90. 6 pp.

Zilter, T. A. y Tsai, J. H. 1981. Viruses infecting tomato in southern Florida. Plant Dis. 65:787-791.

Zimmerman-Gries, S. Pilowsky, M. y Marco, S. 1976. Occurrences of alfalfa mosaic virus in tomatoes in Israel. Plant Dis. Rep. 60: 895-897.

Zitter, T. A. y Everett, P. H. 1982. Effect of an aphid-transmitted yellowing virus on yield and quality of staked tomatoes. Plant Dis. 66: 456-458.

Zitter, T. A. y Tsai, J. H. 1981. Viruses infecting tomato in southern Florida. Plant Dis. 65:787-791.

Autor:

Dr. José Ramírez Villapudua,

Ramiro González Garza,

M.C. Roque A. Sáinz Rodríguez.

Agrobiologica, S.A. de C.V., Biociencia, S.A. de C.V. y Universidad Autónoma de Sinaloa.

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