Rotylechus sp (página 2)

Especies y distribución

Fuente: © Bayer CropScience 2007

CULTIVOS QUE ATACA

Los nematodos espirales son ectoparásitos que pueden entrar parcialmente a las raíces. El nematodo espiral ha sido notificado como una plaga de la lechuga solamente en california.

Rotylenchus robustus Filipjev es la única especie de los géneros de nematodos espirales, Rotylenchus y Helicotylenchus, que parasitan lechuga, zanahoria, guisantes, coles de bruselas y coliflor son buenos huéspedes, mientras que acelga, espinacas y remolacha rojas son malos huéspedes. El nematodo ha sido asociado con el decaimiento de las plantas ornamentales (SFA, 2001).

PRINCIPALES CULTIVOS A LOS QUE AFECTA

• PALTO (Persea americana – Lauraceae)

• ARROZ (Oryza sativa – Poaceae)

• BAMBÚ (Bambusa vulgaris – Poaceae)

• BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana AAA – Musaceae)

• CACAO (Theobroma cacao – Sterculiaceae)

• CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum officinarum – Poaceae)

• COCOTERO (Cocos nucifera – Arecaceae)

• COLIFLOR (Brassica oleracea – Brassicaceae)

• GUAYABA (Psidium guajava – Myrtaceae)

• LIMA PERSA (Citrus aurantifolia – Rutaceae)

• MAIZ (Zea mays – Poaceae)

• MANGO (Mangifera indica – Anacardiaceae)

• MARAÑÓN (Anacardium occidentale – Anacardiaceae)

• MELOCOTÓN (Prunus persica – Rosaceae)

• MELON (Cucumis melo – Cucurbitaceae)

• NARANJA (Citrus sinensis – Rutaceae)

• PAPA (Solanum tuberosum – Solanaceae )

• PAPAYA (Carica papaya – Caricaceae)

• PEPINO (Cucumis sativus – Cucurbitaceae)

Ciclo de la enfermedad y epidemiologia:

Se carece de estudios detallados del ciclo de vida de R. robustus. Como ectoparásito, permanece fuera de la raíz del huésped, alimentándose en cualquier parte del sistema radicular excepto la punta de las raíces. Se alimenta de las sustancias de las celular epidérmicas y en los pelos de las raíces, y también más profundamente en raíces en células del parénquima cortical. Las picaduras matan y secan a las células, que se vuelven amarillentas y mas tardes pardas. La necrosis sigue estando restringida a las proximidades del sitio de alimentación. Las hembras adultas ponen huevos en el suelo alrededor de las raíces. Todos los estados juveniles y adultos permanecen vermiformes. Se producen machos y presumiblemente participan en la reproducción sexual. La reproducción de R. robustus en lechuga tiene lugar igualmente bien entre 18.5 y 24 °C.

Control

Limitada información sobre el tipo de huésped sugiere que los cultivos de quenopoiaceas pudieran ser útiles como cultivos de rotación para reducir los niveles de población antes de plantar las lechugas. La fumigación pre plantación del suelo controla R. robustus en lechuga y otros cultivos (SFA, 2001).

Sintomatología y daños

Rotylenchus sp. ectoparásito migratorio, cuyos daños en el sistema radicular provocan, en general, en los cultivos una falta de crecimiento, escaso vigor, amarilleo y perdida de hojas, entre otros (BARRIGA, 1965)

• Síntomas:

Las picaduras causan necrosis de las células y sistema radiculares raquíticos. Las lesiones pueden unirse y formar áreas necróticas visibles en las raíces. En áreas infestadas en campo, con 5000 nematodos por 100 cm3 de suelo recogido alrededor de las raíces (SFA, 2001).

Daño:

Se ve reflejado principalmente en las partes aéreas de la planta y se manifiesta con un menor crecimiento, síntomas de deficiencias en nutrientes como amarillamiento del follaje, marchitamiento excesivo en tiempo cálido o seco, una menor producción de la planta y una baja calidad de los productos (BAYER, 2007).

Modo de vida y relación parasítica

Probablemente, Rotylenchus sp, es el único nematodo de la subfamilia hoplolaiminae que presenta una estrategia de crecimiento parecida a "k". Esto quiere decir a grandes rasgos que su ciclo de vida es largo y que su tasa de incremento de la población no es alta. Por ejemplo, ciclo de vida de R. robustus en condiciones naturales dura entre 14 y 18 meses ó 100 días a una temperatura experimental constante de 23 °C. En cuanto a su parasitismo, prefiere las pequeñas raíces y coloniza la región de elongación o la zona cerca de la punta de la raíz. Puede alimentarse como ectoparásito o continuamente hasta por 5 días de diferentes células de un solo sitio. En presencia de altas poblaciones, plantas como zanahoria, lechuga, guisantes y clavel muestran lesiones necróticas sobre las superficies de las raíces, disminución de biomasa radical y enanismo. Aunque es poco frecuente, Rotylenchus puede ocasionar al igual que Ditylenchus síntomas de fasciación (mal deformacion) como ha sido demostrado en Lilium henryi (VOLCY, 1998).

Diagnóstico

La determinación morfológica y morfométrica de nematodos fitopatógenos en los laboratorios de diagnóstico, dado el amplio rango de especies existentes, resulta complicada. En los últimos años, se han desarrollado técnicas moleculares, sobre todo para la identificación de las especies más importantes, que facilitan enormemente el diagnóstico, por lo que se están implantando para su uso rutinario.

Antes de caracterizar un determinado nematodo mediante un marcador molecular apropiado, es necesario extraer su ADN, por eso se considera este paso como el más crítico a la hora de aplicar técnicas moleculares. Se han descrito distintos métodos de extracción para distintos géneros.

El protocolo estudiado fue el propuesto por Bulman y Marshall (1997) para la extracción de ADN de Globodera. El método se aplicó a nematodos de los géneros Globodera, Heterodera, Meloidogyne y Rotylenchus probando diferentes tipos de material de partida: quistes, adultos, juveniles y huevos. Actualmente el método se está ensayando con el género Xiphinema

Existe poca información sobre el diagnóstico molecular del género Rotylenchus y por el momento no hay ningún procedimiento basado en técnicas moleculares específico para este género. Por ello como método de apoyo al examen morfológico, en laboratorio se lleva cabo la amplificación de la región ITS1 (espaciador transcrito interno se refiere a un pedazo de la no-ARN funcional situado entre estructurales ribosomal RNA (rRNA) en una transcripción precursor común) de este género. El método que que se utiliza, estima el tamaño de la región ITS1 de Rotylenchus en 900 pb (10-36 cm2) aproximadamente.

EL programa de PCR (Reacción en cadena de la polimerasa) utilizado fue el siguiente: 94 ºC 5 min, 35 ciclos de 94 ºC 45 s, 50 ºC 10min, 72 ºC 1 min, seguidos de una extensión final a 72 ºC durante 12 min. Una alícuota del producto de PCR se resolvió mediante electroforesis en gel de agarosa al 2 % en tampón TBE 1X a 100 voltios (Figura 3). Se observa la banda de 900 pb correspondiente a la región ITS de Rotylenchus. En estos momentos se está optimizando el proceso para evitar la presencia de bandas inespecíficas (BULMAN Y MARSHALL, 1997).

Bibliografía

• 1. BARRIGA, R. 1965. Parasitismo de camelias por algunas especies de nematodos. Nematologica. 11,34

• 2. BAYER, 2007. Problemas biológicos; Rotylenchus sp. [En línea]: Bayer CropScienc, (http://www.bayercropscience-ca.com/pls/web_bayer/inicio.html, Doc. 19 Febrero 2010).

• 3. BULMAN, S.R. y MARSHALL, J. W. 1997. Differentiation of Australian potato cyst nematode

• 4. KRALL, E. L. 1985. Root parasitic nematodes; family haplolaimidae. 1era edicion. Nueva Delhi, India, Oxonian press ltd. p. 250.

• 5. SFA. 2001. Plagas y enfermedades de la lechuga; nematodo espiral. 2da Edicion. Madrid, España, Mundi Prensa Libros, S.A. p. 17.

• 6. VOLCY, CH. 1998. Nematodos. Diversidad de parasitismo en plantas, Medellín – Colombia. 2(1):49 – 50.

Anexo

Figura 1. Fotografia de Rotylenchus sp

Figura 2. Diformismo sexual. Macho: A, B y C; hembra D y E.

Figura 3. Gel de agarosa al 2% mostrando el ADN amplificado a partir de adultos de Rotylenchus. M: Marcador de peso molecular de 100 pb. Calles 1, 2 y 3: Rotylenchus sp. Calle 4: control negativo

Los triblásticos o triploblásticos son animales (metazoos) en cuyo desarrollo embrionario temprano se diferencian tres hojas embrionarias:ectodermo, endodermo y mesodermo. Ésta última está ausente en los diblásticos, cuyo nombre alude a la presencia de solo dos hojas 

Autor:

Hernández Caballero, Tonino

TINGO MARIA – PERÚ

2010.