Descargar

Enfermedades fungosas del suelo en tomate (página 2)


Partes: 1, 2

La rotación de cultivos por tres años con maíz, sorgo, arroz o trigo, por ejemplo, re- duce las pérdidas. Una regulación cuidadosa de la humedad del suelo y el arado profundo para enterrar los residuos afectados también ayuda a reducir esta enfermedad.

El cultivar TH318 tiene algo de tolerancia a la marchitez sureña.

La aplicación al suelo de los hongos Gliocladium y Trichoderma harzianum y la bacteria Bacillus subtilis (AgroBacilo o Probacil) es efectiva para controlar esta enfermedad. Es recomendable evadir terrenos infestados.

También, el desarrollo de la enfermedad se puede detener, en parte, mediante la aplicación al suelo (a través del sistema de riego por goteo) de:

Cuadro 18. Productos recomendados para la marchitez sureña

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Bacillus subtilis (SL)

AgroBacilo, BaciFol, Probacil, Serenade,

4-6 L

exento

Benomil (1)

Benlate, Blindaje, Funlate

0.5-1.0 kg

5

Captan (SL)

Captan

1.5-3.0 kg

25

Pentacloronitrobenzeno

PCNB o Quintozeno, Pentaclor 600

3.0 kg, 12-15 L

0.10

Tiofanato Metílico (SL)

Cercobin M

0.7-1.0

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Moho Blanco

Sclerotinia sclerotiorum (Liberty) De Bary

Síntomas

El hongo puede infectar hojas, tallos, pecíolos y frutos. Los primeros síntomas son pérdida de vigor, seguido por marchitamiento y finalmente muerte de la planta. Es muy típico un crecimiento blanco mohoso que puede observarse en la base del tallo principal. Una pudrición progresiva de los tejidos externos es seguida por ahuecamiento interno de la médula. Cuerpos negros de forma irregular llamados esclerocios pueden encontrase en la superficie o dentro de los tallos y son importantes para diagnosticar esta enfermedad (Foto 35).

edu.red

Foto 35. Síntomas de moho blanco causados por Sclerotinia sclerotiorum. Obseve la pudrición blanda y los esclerocios en los frutos y el interior de tallos huecos.

Desarrollo de la enfermedad

La enfermedad ocurre cuando hay altos niveles de humedad y temperaturas moderadas. Las condiciones de alta humedad prolongada, como lluvias frecuentes, rocío o nieblas favorecen a este hongo. Esta enfermedad ocurre más comúnmente enseguida de un cultivo susceptible como la alfalfa, apio, lechuga, frijoles, berenjena, chiles o tomates. Los esclerocios negros y duros que sobreviven en el suelo de una temporada a la siguiente son la fuente principal de la infección (Foto 34).

Control

Las buenas prácticas culturales, como el saneamiento, la rotación de cultivos y un buen drenaje ayudarán a reducir esta enfermedad. Es importante evitar campos que han tenido Sclerotinia anteriormente. Inundando los campos contaminados por cinco semanas durante el verano puede controlar esta enfermedad. En los invernaderos la esterilización por medio de vapor de agua caliente proporciona excelente control de la enfermedad.

Variedades resistentes o tolerantes: ninguna.

Pentacloronitrobenceno o quintoceno, 10 a 30 gramos por m2.

Los benzimidazoles son fungistáticos y no fungicidas. Los esclerocios inhibidos sobreviven cuanto más activos se muestran estos fungicidas frente a Trichoderma y Gliocladium, agentes de destrucción de los esclerocios en el suelo.

Dicarboxamidas, iprodiona, vinclozolina también han experimentado descenso de actividad anticriptogámica. Esto se debe a que su uso repetido estimula la aparición de una microflora en el suelo muy apta a degradarlos rápidamente, lo que reduce su tiempo de efectividad. Su efecto, en lugar de durar dos o tres meses, únicamente perdura durante varias semanas.

Cuadro 19. Productos recomendados para el moho blanco

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Bacillus subtilis (SL)

AgroBacilo, BaciFol, Serenade,

4-6 L

exento

Benomil (1)

Benlate, Blindaje, Funlate

0.5-1.0 kg

5

Dicloran

Botran

4-5 kg

Fenhexamid (SL)

Elevat

0.2-0.3 kg/100 L agua

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Pudrición de Raíces

Phytophthora parasitica Dastur y P. capsici Leonian

Síntomas

Por debajo o por arriba de la superficie del suelo se desarrollan lesiones café que eventualmente pueden ceñir el tallo o la raíz. Estas lesiones café se vuelven largas y hundidas. Una coloración café chocolate interna del sistema vascular se extiende por debajo y por arriba de de estas lesiones cafés hundidas a una corta distancia. En ocasiones el tallo o raíz pueden pudrirse. Este organismo puede causar damping-off en el estado de plántula (Foto 36-A).

edu.red

Foto 36. Síntomas de pudrición de raíces y tallo por Phytophthora parasitica (A). Micelio (B) en caja petri y esporangios (C y D) del patógeno.

Desarrollo de la enfermedad

La infección inicial por el hongo es favorecida por moderados niveles de humedad. Después de esto las condiciones de suelo mojado son esenciales para el desarrollo rápido de la enfermedad.

Control

Los métodos culturales, los cuales ayudan a un buen drenaje contribuyen al control de esta enfermedad. Algunos de estos métodos son: 1. Evitar la compactación del suelo; 2. Preparar camas altas para permitir un mejor drenaje, y 3. Dar riegos ligeros para evitar largos periodos de saturación del suelo.

La aplicación de productos químicos en forma de drench (chipichipi), directamente al cuello y raíz de la planta, puede ayudar al control de la enfermedad.

Cuadro 20. Productos recomendados para la pudrición de raíces por Phytophthora.

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Dolencia

en ppm

Acido fosforoso

Fosphite

2.5-5.0 cc/L

Exento

Bacillus subtilis (SL)

AgroBacilo, BaciFol, Serenade

1-3 g/L

Exento

Ciazofamida

Ranman

0.2-0.25 cc/L

Cymoxanil (5)

Curzate M-8

2.0-3.0 g/L

0.1

Dimetomorf (1)

Forum 500

0.6 cc/L

Famoxate*

FamoxateJ Technical

Fenoxadona (22.5%) + cymoanil 30% (3)

Equation Pro

0.4-0.8 g/L

Fosetyl-A (14)

Áliette WDG

2-4 g/L

Hidróxido cupric (SL)

Hidrocu, Blue Shield, Cupravit Hidro, Kocide 2000

2-4 g/L

Exento

Mandipropamida (1)

Revus

0.5-1 g/L

1.0

Mefenoxam = Metalaxyl-M (5)

Ridomil Gold 480

1.5-2.5 cc/L, 0.5 cc/mil plántulas

1

Oxicloruro de cobre (SL)

Cupravit, Cupertron, Mixcu

2.-4 g/L

Exento

Oxicloruro de cobre 39%+ Mancozeb 30% (5)

Cupravit Mix

Propamocarb clorhidrato (14)

Previcur N, Consento, Tattoo, Proplant 720

1.5-1.75 L

0.50

Sulfato tribásico de Cu (SL)

Cuperquimm

2.5-3 g/L

Exento

Trichoderma (SL)

AgroTricho, TricoSin

1-2 g/L

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Pudrición de Suelo

Rhizoctonia solani Kühn

[teleomorfo: Thanatephorus cucumeris (Frank) Donk]

Síntomas

Este hongo ataca a los frutos en todos los estados de desarrollo. El patógeno penetra al fruto a través de heridas o directamente la epidermis no rota, causando numerosas manchas pequeñas cafés hundidas en el lado del fruto que está en contacto con el suelo (Foto 37). Generalmente hay un solo punto de invasión por el hongo, y a medida que la mancha se alarga ésta se presenta zonas concéntricas angostas de color café. La epidermis se rompe en el centro de la mancha.

Control

Esta enfermedad casi nunca es de importancia en el campo donde las plantas se desarrollan en estacados, podadas y/o desarrolladas en acolchados plásticos. Las pérdidas de frutos en tránsito pueden ser controladas seleccionando cuidadosamente los frutos en el empaque.

edu.red

Foto 37. Síntomas de "pudrición de suelo" por Rhizoctonia solani en frutos en contacto con el suelo.

Bibliografía

Abawi, G. S., Grogan, R. G. 1979. Epidemiology of diseases caused by Sclerotinia species. Phytopathology, 69: 899-904.

Alexander, L. J. 1962. Susceptibility of certain Verticillium-resistant tomato varieties to an Ohio isolate of the pathogen. Phytopathology 52:998-1000.

Alexopoulus, C. J., Mims, CW. 1987. Introduction a la Micologia. Ed. Omega.

Anas, O; Alli, I; Reeleder, R. D., 1989: Inhibition of germination of sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum by salivary gland secretions of Bradysia coprophila. Soil Biology and Biochemistry, 21: 47-52.

Anas, O; Reeleder, R. D. 1988: Consumption of sclerotia of Sderotinia sclerotiorum by larvae of Bradysia coprophila: influence of soil factors and interactions between larvae and Trichoderma vidride. Soil Biology and Biochemistry, 20: 619-624.

Anderson, A. L. and DeZeeuw, D. J. 1952. Seed treatrnent studies for damping off control in garden and canning beans. Mich. Agr. Exp. Sta. Quart. Bull. 34(4):357-364.

Ashworth, L. J. Jr., Huisman O. C., Harper D. M. and Stromberg, L. K. 1978. Verticillium wilt disease of tomato: lnfluence of inoculum density and root extension upon disease severity. Phytopathology 69:490-492.

Ayers, W. A. Adams, P. B. 1981. Factors affecting germination, mycoparasitism and survival of Sporidesmium sclerotivorum. Canadian Journal of Microbiology, 25: 1021-1026.

Ayers, W. A. Adams, P. B., 1981. Mycoparasitism of sclerotial fungi by teratosperma oligo dadum. Canadian Journal of Microbiology, 27: 886-892.

Ayers, W. A., Adams, P. B., 1979. Mycoparasitism of sclerotia of Sclerotinia and Sclerotium species by Sporidesmium sclerotivorum. Canadian Journal of Microbiology, 25: 17-23.

Baraer, J. 1979. Revue Horticole, Pepinieristes, horticulteurs, Maraicheurs, n.° 198, Juin/Juilliet: 52-54.

Barksdale, T. H. 1968. Rhizoctonia soil rot and buckeye rot of tomatoes: Observational differences in susceptibility. Plant Dis. Rep. 52:284-286.

Barnett, H.L. 1998. Illustrated Genera of Imperfect Fungi, 4ta.Ed. APS Press. 216pp.

Chamberlain, E. E. 1932. Sclerotinia disease of tomato. N. Z. Jour. Agr. 45:260-268.

Chowdhury, S. 1946. Effect of hydrogen-ion concentration on the growth and parasitism of Sclerolium roljsii. Indian Jour. Agr. Sci. 16:293-296.

Davey, A. E. and Leach, L. D. 1941. Experiments with fungicides for use against Sclerotium rolfsii in soils. Hilgardia 13:523-547.

Eddins, A. H. and West, E. 1946. Sclerotium rot of potato seed pieces. Phytopathology 36:239-240.

Epps, W. M., Patlerson, J. C. and Freeman, L. E. 1951. Physiology and parasitism of Sclerotium rolfsii. Phytopathology 41.-245-2S6.

Fulton, J. P. and Fulton, N. D. 1951. Phytophthora root rot of tomato. Phytopathology 41:99­-101.

Gabe, H. L. 1975. Standardization of nomenclature for pathogenic races of Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Trans. Br. Mycol. Soco 64:156-159.

Gohari, H., Ballester, F. 1991. Regies de decision pour la reduction destraitements centre Sclerotinia sclerotionum sur colza en fonction des conditions climatiques. Bulletin OEPP 21: 507-514.

Goode, M. J., McFerran, J. and Fudge, T. G. 1972. Preventing the spread of race 2 of the tomato Fusarium wilt fungus. Ark. Farm Res. 21:16.

Green, R. J. Jr. 1969. Survival and inoculum potential of conidia and microsclerotia of Verticillium albo-atrum in soil. Phytopathology 59:874-876.

Haas, J. H., Bolwyn, B. 1973. Predicting and controlling white mold epidemics in white beans. Canada Agriculture., 18: 28-29.

Haasis, F. A. 1952. Soil fumigation with chorobromopropene for control of Sclerotium rolfsii in Dutch Iris. Plant Dis. Rep. 36:475-478.

Harvis, W. R. and Shoemaker, R. S. 1978. Taxonomic status of Fusarium oxysporum causing foot and root rot of tomato. Phytopathology 68:1679-1680.

Hawksworth, D. L. and Talboys, P. W. 1970. Verticilium dahliae. CMI. Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria. No. 256. 2 pp. Kew, Surrey, England.

Honda, Y; Yunoki, T. 1977. Control of Sclerotinia disease of greenhouse eggplant and cucumber by inhibition of development of apothecia. Plant Disease Reporter, 61: 1036-1040.

Hope, C., Stoutemyer V. T. and Close, A. W. 1941. The control of damping-off by the use of sphagnum for seed germination. Jour. Amer. Soco Hort. Sci. 39:397-406.

Horsfall, J. G. 1938. Combating damping-off. N.Y. (Geneva) Agr. Exp. Sta. Bull. 683:1-46.

Huang, H. C. 1978: Gliocladium catenulatum; hyperparasite of Sclerotinia sclerotiorum and Fusarium species. Canadian Journal of Botany, 55: 2243-2246.

Huang, H. C. 1980: Control of sclerotinia wilt of sunflower by hiperparasites. Canadian Journal of Plant Pathology, 2: 26-32.

Huang, H. C; Hoes, J.A. 1976. Penetration and infection of Sclerotinia sclerotiorum by Coniothyrium minitans. Canadian Journal of Botany, 54:406-410.

Huang, H. C.; Kokko, E. G., 1988: Penetration of hyphae of Sclerotinia sclerotiorum by Coniothyrium minitans without the formation of apresoria. Journal of Phytopathology, 123: 133-139.

Jacks, H. 1951. The efficiency of chemical treatments of vegetable seeds against seed-bome and soil-bome organisms. Ann. Appl. Biol 38:135-168.

Johnson, J. C. 1964. Use of dichloran against Sclerotinia rot of tomatoes. Queensland Jour. Agr. Sci. 21:133-135.

Johnson, S. P. 1953. Some factors in the control of the Southern blight organism, Sclerotium rolfsii. Phytopathology 43:363-368.

Joland, G. J; Hunter, J. E. 1988. Influence of Alternaria alternata and Cladosporiun cladosporoides on white mold of bean caused by Sclerotinia sclerotiorum. Canadian Journal of Plant Pathology, 10: 172-177.

Jones, J. P. and Overman, A. J. 1971. Control of Fusarium wilt of tomato with lime and soil fumigation. Phytopathology 61:1415-1417.

Jones, J. P. and Overman, A. J. 1978. Evaluation of chemicals for the control of Verticillium and Fusarium wilt of tomato. Plant Dis. Rep. 62:451-455.

Jones, J. P. and Crill, P. 1975. Reaction of resistant, tolerant, and susceptible tomato varieties to Verticillium wilt. Plant Dis. Rep. 59:3-6.

Jones, J. P. and Crin, P. 1974. Susceptibility of "resistant" tomato cultivars to Fusarium wilt. Phytopathology 64:1507-1510.

Jones, J. P. and Woltz, S. S. 1972. Effect of soil pH and micronutrient amendments on Verticillium and Fusarium wilt of tomato. Plant Dis. Rep. 56:151-153.

Kadow, K. J. 1934. Seed transmission of Verticillium wilt of eggplants and tomatoes. Phytopathology 24:1265-1268.

Katin, J. 1971. Symptomless carriers of the tomato Fusarium wilt pathogen. Phytopathology 61:1213-1217.

Kreutzer, W. A. and Bryant, L. R. 1946. Certain aspects of the epiphytology and control of tomato fruit rot caused by Phytophthora capsici Leonian. Phytopathology 36:329-339.

Leach, L. D. and Davey, A. E. 1938. Determining the sclerotial population of Sclerotium rolfsii. Jour. Agr. Res. 56:619-631.

Lee, Y. A; Wu, W. S. 1979. Management of the sclerotinia disease with biological and chemical methods. Memoirs of the College of Agriculture National Taiwan University, 19: 96-107.

Lynch, J. M; Ebben, M. H; Whipps, J. M; Claydon, N; Magan, N; Hand, P; Budge, Coley Smith, J. R; Hanson, J. R. 1985: Biological control of soilborne diseases. Annual Report Glasshouse Research Institute: 140-146.

Lynch. J. M. 1987. In vitro identification of Trichoderma harzianum as a potential antagonist of plant pathogens. Current Microbiologv, 16: 49-53.

McClellan, W. D. 1947. Effect of certain soil fumigants and fertilizers against crown-rot in annual larkspur caused by Sclerotium rolfsii. Phytopathology 37:198-210.

Mercier, J; Reeleder, R. D. 1987. Interactions between Sclerotinia sclerotiorum and other fungi on the phylloplans of lettuce. Canadian Journal of Botany, 65:1633-1637.

Merriman, P. R. 1976. Survival of sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum in soil. Soil Biology and Biochemistry 8: 385-389.

Messiaen, C. M. y Lafon, R. 1967. Enfermedades de las hortalizas. Oikos-Tau. S.A.

Mueller, J. D; Cline, M. N; Sinclair, J. B; Jacobsen, B. J., 1985. An in vitro test for evaluating efficacy of mycoparasites on sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum. Plant Disease 69: 584-587.

Natti, J. J., Schroeder W. T., Hervey G. E. R. and McEwen, F. L. 1958. Value of insecticide fungicide combination treatments as protectants for seed of cucumber and winter squash. Plant Dis. Rep. 42:127-133.

Nutter, F. W., Warren C. G., Wells O. S. and MacHardy, W. E. 1978. Fusarium foot and root rot of tomato in New Hampshire. Plant Dis. Rep. 62:976-978.

Obrero, F. C. and Aragaki, M. 1965. Some factors influencing infection and disease development of Phytophthora parasitica Dast on tomato. Plant Dis. Rep. 49:327-331

Paintin, R. D. 1928. Notes on the parasitology of Sclerotium rolfsii. Mycologia 20:22-26.

Phillips, A. J; Price, K. 1983. Structural aspects of the parasitism of sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary by Coniothyrium minitans Camp. Phytopathologische Zeitschrift 107: 193-203.

Purdy, L. H. 1958. Sorne factors affecting penetration and infection by Sclerotinia sclerotiorum. Phytopathology 48:605-609.

Purdy, L. H. 1979. Sclerotinia sclerotiorum: History, diseases and symptomatology, host range, geographic distribution, and impact. Phytopathology 69:875-880.

Rainbow, A. F. 1970. Sclerotinia disease in dwarf tornatoes. N. Z. Jour. Agr. 121:58-62.

Ramírez-Villapudua, J. 1985. Effect of solarization of soil amended with cabbage residues on Fusarium oxysporum. f. sp. conglutinans, race 5. Phytopathology 75:1291, abstract 110.

Ramírez-Villapudua, J. 1985. Effect of various organic amendments and volatiles emanations from decomposing cabbage on F.o. f. sp. conglutinans races 5. XII Congreso Nacional de Fitopatología de la Soc. Mex. de Fitopatología y XXV Anual Meeting of the American Phytopathological Society, Caribbean División. Guanajuato, Gto. Resumen 151.

Ramírez-Villapudua, J. 1986. Uso de solarización y residuos de repollo para el control de Fusarium oxysporum f.sp. conglutinans. XIII Congreso Nacional de Fitopatología de la Sociedad Mexicana de Fitopatología, Tuxtla Gutiérrez, Chiapas. Pág. 72.

Ramírez-Villapudua, J. 1989. Efecto de la solarización y metam-sodio sobre la pudrición de la corona y raíz del tomate (Fusarium oxysporum f.sp. radicis-lycopersici), malas hierbas y desarrollo del tomate (Lycopersicon esculentum). XVI Congreso Nacional de Fitopatología, Montecillo, México. Pág. 156.

Ramírez-Villapudua, J. 1991. Enfermedades de Hortalizas (edición agotada). Universidad Autónoma de Sinaloa. Edición de 1,000 ejemplares, de 105 páginas. Culiacán, Sinaloa, México.

Ramírez-Villapudua, J. 1991. El acolchado con plásticos en cultivos hortícolas. En Afidos Como Vectores de Virus, un Reto a la Investigación Interdisciplinaria en México. Ed. Centro de Fitopatología-Colegio de Postgraduados. Montecillo, edo. de Méx., México. Del 1 al 17 de julio de 1991. Difusión.

Ramírez-Villapudua, J. 1991. Solarización del suelo para el control de enfermedades de plantas. Segundo Curso Nacional de Enfermedades de Hortalizas, Culiacán, Sinaloa, del 13 al 18 de marzo de 1989.

Ramírez-Villapudua, J. 1991. Incremento de la efectividad de la solarización del suelo para controlar Sclerotium y Fusarium mediante el uso de dos capas de plástico. XVIII Congreso Nacional de Fitopatología de la Sociedad Mexicana de Fitopatología, Puebla de Los Angeles, del 24 al 26 de julio de 1991. Pág. 156.

Ramírez-Villapudua, J. 1991. El acolchado con plástico y los cultivos hortícolas. Agronomía en Sinaloa 3: 2-7.

Ramírez-Villapudua, J. 1996. La Solarización del Suelo, un Método Sencillo para Controlar Fitopatógenos y Malas Hierbas. Universidad Autónoma de Sinaloa. Edición de 1,000 ejemplares, de 68 páginas. Culiacán, Sinaloa, México. Difusión. ISBN: 968-7448-16-4.

Ramírez-Villapudua, J. 1996. El Uso de Acolchados Plásticos en la Horticultura. Universidad Autónoma de Sinaloa. Edición de 1,000 ejemplares, de 70 páginas. Culiacán, Sinaloa, México. Difusión.

Ramírez-Villapudua, J. 2000. Solarización del suelo. Congreso Internacional del cultivo de melón. Colima, Colima, 26-29 de julio de 2000.

Ramírez-Villapudua, J. 2000. Técnicas de plasticultura para el desarrollo de cultivos hortícolas. SQM de México. Puerto Vallarta, Jalisco, mayo 18 de 2000.

Ramírez-Villapudua, J., Estrada-Ramírez, F.J., y Sáinz Rodríguez, R. A. 1992. Efecto de la solarización del suelo en bolsas de polietileno sobre patógenos causantes de pudriciones radicales. XIX Congreso Nacional de Fitopatología de la Sociedad Mexicana de Fitopatología, Saltillo, Coahuila, México.

Ramírez-Villapudua, J., López-Villapudua, J.R., y López Villapudua, C. 1990. Enfermedades del tomate (Lycopersicon esculentum) en Yurécuaro y Thanuato, Michoacán. XVII Congreso Nacional de Fitopatología de la Sociedad Mexicana de Fitopatología, Culiacán, Sinaloa, México. Pág. 57.

Ramírez-Villapudua, J. y Montoya-Angulo, S. 1992. La solarizacion del suelo, una alternativa para controlar patógenos y malas hierbas. Agronomía 2:12 18.

Ramírez-Villapudua, J. y Munnecke, D.E. 1986. Solar heating and amendments control cabbage yellows. California Agriculture 40:11-13. USA. Investigación.

Ramírez-Villapudua, J. y Munnecke, D.E. 1987. Control of cabbage yellows (Fusarium oxysporum f.sp. conglutinans) by solar heating of field soils amended with dry cabbage residues. Plant Disease 71:217-221.

Ramírez-Villapudua, J. and Munnecke, D. E. 1988. Effect of solar heating and soil amendments of cruciferous residues on Fusarium oxysporum f.sp. conglutinans and other organisms. Phytopathology 78:289-295.

Ramírez-Villapudua, J. y Sáinz Rodríguez, R.A. 1994. Manejo integrado de enfermedades en hortalizas. En Curso de Aprobación de Profesionales en el Manejo Fitosanitario de Hortalizas. Ed. Secretaría de Agricultura y Recursos Hidráulicos Univ. A. de Sinaloa, pág. 118-122. Villa Gustavo Díaz Ordaz, Sinaloa, México. Del 10 al 14 de octubre de 1994.

Ramírez-Villapudua J. y Romero-Cova, S. 1980. Supervivencia de Phytophthora capsici Leo., agente causal de la marchitez del chile. Agrociencia 39:9-18. México.

Ramírez-Villapudua, J. y Romero-Cova, S. 1979. Supervivencia de Phytophthora capsici Leo., agente causal de la marchitez del chile. I Cong. Latinoamericano de Fitopatología. Maracaibo, Venezuela. 1979. Pág. M11-8.

Ramírez-Villapudua, J. y Sáinz-Rodríguez, R. A. 2002. Enfermedades y Plagas del Cultivo del Tomate. Agrobiológica, Culiacán, Sinaloa, México. Difusión. 65 páginas.

Ramírez-Villapudua, J. y Sáinz-Rodríguez, R. A. 2010. Manejo Integrado de las Enfermedades del Tomate. "da Edición, Imprenta 11 Ríos. Agrobiológica, S.A. de C.V. Culiacán, Sinaloa, México. 391 páginas.

Ramírez-Villapudua, J. y Estrada-Ramírez, F.J. 1994. Effect of soil solarization and metam-sodio on crown and root rot of tomato (Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici). XV Congreso Latinoamericano de Fitopatología de la Soc. Latinoamericana de Fitopatología. Santiago de chile, Chile. Resumen 054, pág. 33.

Ramírez-Villapudua, J. y Estrada-Ramírez, F.J. 1994. Increasing effectiveness of solarization against pathogens and weeds by mean of two layers of polyethylene. XV Congreso Latinoamericano de Fitopatología de la Sociedad Latinoamericana de Fitopatología. Santiago de chile, Chile. Resumen 055, pág. 33.

Sáinz-Rodríguez, R.A. y Ramírez-Villapudua, J. 1991. Principales enfermedades del cultivo del tomate de cáscara (Physalis ixocarpa), en Yurécuaro y Thanuato, Michoacán. XVIII Congreso Nacional de Fitopatología de la Sociedad Mexicana de Fitopatología, Puebla de Los Angeles, del 24 al 26 de julio de 1991. Pág.

Rowe, R. C. 1980. Comparative pathogenicity and host ranges of Fusarium oxysporum isolates causing crown and root rot of greenhouse and field-grown tomatoes in North America and Japan. Phytopathology 70:1143-1148.

Rowe, R. C. and Farley, J. D. 1981. Strategies for controlling Fusariurn crown and root rot of greenhouse tornatoes. Plant Dis. 65:107-112.

Sanchez, L. E., Endo, R. M. and Leary, J. V. 1975. A rapid technique for identifying the clones of Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici causing crown-and root-rot of tomato. Phytopathology 65:726-727.

Santos, A. F. Dos; Dhingra, O. D. 1982: Pathogenicity of Trichoderma spp. on the sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum. Canadian Journal of Botany 60: 472-475.

Selman, I. W. and Buckley, W. R. 1959. Factors affecting the inyasion of tomato roots by Verticillium alboatrum. Trans. Brit. Mycol. Soco 42:227-234.

Sewell, G. W. F. 1959. Direct obseryation of Verticillillm albo-atrum in soil. Trans. Brit. Mycol. Soco 42:312-321.

Sharvelle, E. G. 1979. Plant Disease Control. pp. 191-206. Avi Publishing Co., lnc., West­ port, CT.

Sherf, A. F. y MacNab, A. A. 1986. Vegetable Diseases and Their Control, 2da Ed. John

Sijpesteijn, A. K. 1982: Mechanism of action of fungicides. En Dekker y Georgopoulos (Editors): Fungicide resistance in crop protection, Centre for Agricultural Publishing and Documentation, Wagenigen, Holanda.

Sokhi, S. S. and Sohi, H. S. 1975. Chemical control of buckeye rot of tomato caused by Phytophthora nicotianae var. parasitica. Indian Phytopathology 27:444-445.

Tello-Marquina, J. C. y Alabouvette, C. 1984: Observations sur la persistance dans le sol des microconides de Fusarium oxysporum. Agronomic 4: 885-890.

Tello Marquina, J. C., y Lacasa, A. 1987: La podredumbre del cuello y de las raices causada por Fusarium oxysporum f. sp. radicislycopersici, nueva enfermedad en los cultivos de tomate (Lycopersicum esculentum Mill.) españoles. Bol. San. Veg. Plagas, 14: 307-312.

Tello-Marquina. J. C. 1984. Enfermedades criptogámicas en hortalizas. Comunicaciones INIA, serie Proteccion Vegetal No. 22.

Tompkins, C. M. and Tucker, C. M. 1941. Buckeye rot of tomato in California. Jour. Agr. Res. 62:467-474.

Turkington, T. K., Morrall, R. A. A., Gugel, R. K. 1991. Use of petal infestation to forecast Sclerotinia stem rot of canola: evaluation of early bloom sampling. Canadian Journal of Plant Pathology 13: 50-59.

Turner, T. K., Tribe, H. T. 1976. On Coniothyrium minitans and its parasitism on Sclerotinia species. Transactions of the British Mycological Society 66: 97-105.

Vanacci, G., Triolo, E; Materazzi, A. 1988. Survival of Sclerotinia minor Jagger sclerotia in solarized soil. Plant and Soil. 109: 610-612.

Walker, J. C. 1971. Fusarium wilt of tomato. The American Phytopthological Society, Monografia no. 6.

Walter, J. M. 1967. Hereditary resistance to diseases in tomato. Ann. Rev. Phytopathology 5:131-162.

Waltz, S. S. and Jones, J. P. 1973. Tomato Fusarium wilt control by adjustments in soil fertility. Proc. Fla. State Hort. Soco 86:157-159.

Watson, A. K., Miltimore, J. E. 1975. Parasitism of the sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum by Microsphaeropsis centaureae. Canadian Journal of Botany 53: 2458-2461.

Weber, G. F. 1931. Blight of carrots caused by Sclerotium rolfsii. Phytopathology 21:1129­ -1140.

Weststeijn, G. 1973. Soil sterilization and glasshouse disinfection to control Fusarium oxysporum f. lycopersici in tomatoes in the Netherlands. Neth. Jour. Pl. Path. 79:36-40.

Wilhelm, S. 1950. Verticillium wilt in acid soils. Phytopathology 40:776-777.

Zazerini, A., Tosi, L; Rossi, J. 1987. Antagonistics effects of Bacillus spp., on Sclerotinia sclerotiorum sclerotia. Fitopatologia Mediterranea, 26:185-187.

 

 

Autor:

José Ramírez Villapudua

Roque Abel Sáinz Rodríguez

Agrobiologica, S.A. de C.V. y Universidad Autónoma de Sinaloa, respectivamente

Partes: 1, 2
 Página anterior Volver al principio del trabajoPágina siguiente