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Efectividad de Extractos Botánicos de Diez Plantas Sobre la Mortalidad y Repelencia de Larvas de Rhynchophorus palmarum L.

Partes: 1, 2

    Publicación original: Agric. Téc.. [online]. mar. 2006, vol.66, no.1 [citado 22 Octubre 2006], p.21-30. Disponible en la World Wide Web:

    ISSN 0365-2807 – Reproducción autorizada por: Revista Agricultura Técnica,

    (Insecto Plaga del Pijuayo Bactris gasipaes Kunth en la Amazonía del Perú)

    ABSTRACT: Pest resistance to chemical insecticides has grown in recent years, which is the motive for the search for alternative methods, such as plants with larvicidal activity. The objective of this research was to evaluate mortality and larval repellency of Rhynchophorus palmarum L. (Curculionidae), a pest of the Peach palm Bactris gasipaes Kunth to ten plants with biocide potential: india heliotrope (Heliotropium indicum L., Boraginaceae), angels’ trumpets (Brugmansia sp., Solanaceae), wandering jew (Tradescantia zebrina Hort. ex Bosse, Commelinaceae), nettles-purge (Jathropa curcas L., Euphorbiaceae), soapberry (Paullinia clavigera Schltdl., Sapindaceae), red spurge (Euphorbia cotinifolia L., Euphorbiaceae), annato (Bixa orellana, Bixaceae), golden shower (Cassia fistula L., Fabaceae), birthwort fruit (Aristolochia pilosa Kunth, Aristolochiaceae) and pareira (Chondrodendron tomentosum Ruiz & Pavon, Menispermaceae). Bioassays with R. palmarum were performed at 1, 4, 8, 12 and 24 h exposure, employing 660 larvae under laboratory conditions and aqueous botanical extracts of the plants at a 1:3 (w/v) ratio. At 24 h exposure, the highest mortality percentage of R. palmarum was observed with birthwort fruit (73.30%: liquefied leaves and stems), wandering jew (70%: liquefied leaves and stems) and pareira (60%: wood and bark in decoction). In the case of repellency, the highest effects were found in birthwort fruit (80%), pareira (73.30%) and wandering jew (71.70%). In addition, nettles-purge (liquefied seeds) produced only 3.3% mortality but significantly 55% repellency. The possibility of employing these botanical extracts in integrated management of R. palmarum is analyzed.

    Key words: Aristolochia pilosa, Bactris gasipaes, Bixa orellana, botanical insecticides, Brugmansia, Cassia fistula, Chondrodendron tomentosum, Euphorbia cotinifolia, Heliotropium indicum, Jathropa curcas, mortality, Paullinia clavigera, Peru, repellency, Rhynchoporus palmarum, Tradescantia zebrina, ethnobotanical.

    RESUMEN: La resistencia de las plagas a los insecticidas químicos se ha incrementado en los últimos años, motivo por el que se buscan métodos alternativos, como extractos de plantas con actividad larvicida. El objetivo del presente trabajo fue evaluar el efecto sobre la mortalidad y repelencia de larvas de Rhynchophorus palmarum  L. (Curculionidae), plaga del pijuayo Bactris gasipaes Kunth, de diez plantas con potencial biocida: ucullucuysacha (Heliotropium indicum L., Boraginaceae), floripondio (Brugmansia sp., Solanaceae), oreja de tigre (Tradescantia zebrina Hort. ex Bosse, Commelinaceae), piñon blanco (Jathropa curcas L., Euphorbiaceae), sacha yoco (Paullinia clavigera Schltdl., Sapindaceae), yuquilla (Euphorbia cotinifolia L., Euphorbiaceae), achiote (Bixa orellana L., Bixaceae), retama común (Cassia fistula L., Fabaceae), huancahuisacha (Aristolochia pilosa Kunth, Aristolochiaceae) y curare (Chondrodendron tomentosum Ruiz & Pavon, Menispermaceae). Los bioensayos con R. palmarum se realizaron  a 1, 4, 8, 12 y 24 h, usando 660 larvas bajo condiciones de laboratorio, empleando extractos botánicos acuosos mayormente a la proporción 1:3 (p/v). A 24 h de exposición, los mayores porcentajes de mortalidad de R. palmarum se presentaron con huancahuisacha (73,30%: hojas y tallo licuados), oreja de tigre (70%: hojas y tallo licuados) y curare (60%: madera y corteza en decocción). En el caso de la repelencia, los mayores efectos se encontraron para huancahuisacha (80%), curare (73,30%) y oreja de tigre (71,70%). En adición, piñon blanco (semillas licuadas) produjó sólo 3,3% de mortalidad y significativamente un 55% de repelencia. Se analizan las posibilidades de empleo de estos extractos botánicos en el manejo integrado de R. palmarum.

    Palabras clave: Aristolochia pilosa, Bactris gasipaes, Bixa orellana, Brugmansia, Cassia fistula, Chondrodendron tomentosum, Euphorbia cotinifolia, Heliotropium indicum, insecticidas botánicos, Jathropa curcas, mortalidad, Paullinia clavigera, Perú, repelencia, Rhynchoporus palmarum, Tradescantia zebrina, etnobotánica.

    INTRODUCCIÓN

    El pijuayo Bactris gasipaes Kunth (Arecaceae) para palmito es considerado un cultivo  agroindustrial que forma parte de la economía de ciertos sectores de la región Ucayali, Perú, cuya producción se comercializa directamente en fábricas locales que procesan la materia prima para su expedición a los mercados competitivos en el ámbito nacional como un producto final o semi procesado (Villachica, 1996; Schroth et al., 2000; Adin et al., 2004).

    Rhynchophorus palmarum L. (Col.: Curculionidae) conocido como "suri de palmeras", "picudo" o "casanga", es una de las principales plagas del pijuayo en la región Neotropical (Sánchez-Soto y Nakano, 2002; Guimarães et al., 2003; Parra et al., 2003). Los adultos se encuentran frecuentemente en el área de la corona, y las hembras hacen perforaciones en la zona más blanda de la región internodal, para alimentarse y depositar los huevos. Los adultos de este insecto están señalados como los principales vectores del nemátodo fitoparásito obligado Bursaphelenchus cocophilus (Cobb) organismo causal de la enfermedad "anillo rojo" (Parra et al., 2003). Las formas larvarias de R. palmarum tienen importancia etnozoológica al ser empleadas por los amerindios amazónicos como fuente proteica animal (Cerda et al., 2000; Paoletti et al., 2000).

    La utilización masiva de insecticidas convencionales, y especialmente plaguicidas de amplio espectro, es costosa y trae consecuencias colaterales secundarias, como desarrollo de la resistencia de las plagas, contaminación ambiental, residuos tóxicos en el producto cosechado, aparición de nuevas plagas, eliminación de la entomofauna benéfica e intoxicación del operador (Briones, 1991; Hoss, 1999; Iannacone y Murrugarra, 2000; Iannacone y Reyes, 2001; Iannacone y Montoro, 2002; Simmonds et al., 2002). La utilización de extractos vegetales para el control de plagas tiene la ventaja de no provocar contaminación, debido a que estas sustancias son degradadas rápidamente en el medio (Benner, 1996; Iannacone y Lamas, 2002). De esta forma plantas con potencial biocida constituyen un componente importante de control, dentro del contexto de manejo integrado de plagas (Estrada y López, 1998; Iannacone y Montoro, 2002; Iannacone y Lamas, 2003).

    Para la selección de las especies vegetales con potencial biocida se deben recopilar referencias bibliográficas de importancia local e internacional. Además es útil consultar literatura etnobotánica y de medicina popular (Cáceres et al., 2000; Hellpap, 2000; Khambay, 2000).

    Iannacone (2003) ha señalado que para el desarrollo tecnológico de un plaguicida botánico se deben estandarizar sus métodos de extracción y la propagación de las plantas. La selección de la especie de planta es el primer paso; uno de los métodos claves en la investigación de nuevos plaguicidas botánicos son los bioensayos. Estos bioensayos se emplean para estudiar las propiedades biocidas de las diferentes partes de las plantas (raíces, corteza, hojas, frutos, flores, etc.), la eficacia de los diferentes extractos y formulaciones, y el modo de acción de los ingredientes activos. Los bioensayos deben ser altamente sensitivos a las sustancias bioactivas, fáciles de manipular, baratos, de amplio espectro, y dar rápidos resultados (Iannacone, 2000).

    Con relación a huancahuisacha (Aristolochia pilosa Kunth, Aristolochiaceae), no hay literatura publicada sobre los componentes, y efectos insecticidas y repelentes. Referencias etnobotánicas en Pucallpa, de huancahuisacha, la señalan con propiedades vomitivas (Diana Pérez, observación de la autora).  Sólo se encuentra información sobre otras especies congenéricas a A. pilosa. Hu et al. (2004) mostraron ausencia de efectos toxicológicos y patológicos del género Aristolochia sobre la vejiga urinaria y el hígado de mamíferos. Sin embargo, numerosos estudios en mamíferos señalan efectos nefrotóxicos del ácido aristolóquico de Aristolochia spp. (Liu et al., 2003; Sato et al., 2004; Zhou et al., 2004).  El extracto crudo de Aristolochia bracteata Retz. es usado en medicina tradicional como estimulante gástrico, en el tratamiento del cáncer, para la inflamación pulmonar y en picaduras de serpientes. Además, al igual que Aristolochia trilobata L., esta especie presenta propiedades antibacterianas (Camporese et al., 2003; Negi et al., 2003). Wu et al. (2002) y Shi et al. (2004) registran alcaloides con actividad fisiológica del grupo de las bisbenzilisoquinolinas en las raíces y tallos de Aristolochia elegans Mast. Priestap et al. (2003) han registrado aceites esenciales de las hojas, tallos aéreos y órganos subterráneos de Aristolochia argentina Gris. Fordyce (2001) indica que los alcaloides tóxicos llamados ácidos aristolóquicos son secuestrados de la planta Aristolochia californica Torrey, por  las larvas de la mariposa Battus philenor L. (Lepidoptera: Papilionidae) con el fin de protegerse de sus depredadores. Nascimento et al. (2004) encontraron efectos insecticidas de los extractos acetónicos y etanólicos del tubérculo de Aristolochia pubescens (Willd.) sobre larvas de Anticarsia gemmatalis (Hubner) (Lepidoptera). La cubebina no mostró actividad sobre A. gemmatalis. El ácido aristolóquico y el ent-kaur-15-en-17-ol alargan el período larval. La eudesmina y el sesamin reducen la viabilidad de este período, produciendo malformaciones en los adultos.

    Con relación a curare (Chondrodendron tomentosum Ruiz & Pavon, Menispermaceae) no se tienen referencias publicadas de su uso como insecticida o repelente. Sólo se conoce que C. tomentosum es empleada en la preparación del "ampi", un fuerte veneno utilizado en la caza por las comunidades amazónicas peruanas (Schultes y Raffauf, 1990). Estos efectos tóxicos se deben a su principal alcaloide, la d-tubocurarina (Schultes y Raffauf, 1990; Desmarchelier y Witting, 2000). Este alcaloide actúa bloqueando la transmisión del nervio motor, causando relajación y parálisis flácida del músculo esquelético en el cuerpo (Taylor, 2005). La d-tubocurarina tiene tanta semejanza con la acetilcolina que compite con ella y ocupa su lugar en los receptores de la membrana postsináptica de la placa neuromuscular, bloqueando así la transmisión del impulso nervioso del nervio hacia el músculo. En el Perú esta planta es usada etnobotánicamente como diurético, para edemas, como febrífuga, en orquitis, envenenamiento y cálculos renales (Taylor, 2005).

    La oreja de tigre (Tradescantia zebrina Hort. ex Bosse, Commelinaceae), contiene saponinas responsables de su efecto cáustico, debido a un mucílago que ocasiona irritaciones en la piel (Diana Pérez, observación de la autora). Se le considera una planta de importancia ornamental; se le ha usado para la detección de radiaciones y para el biomonitoreo de la calidad del aire para detectar metales trazas (Isidoro et al., 2003, Kim et al., 2003; Sumita et al., 2003). Pérez y Iannacone (2004) señalan propiedades insecticidas de esta especie sobre formas larvarias de Anopheles benarrochi Gabaldon, Cova García y López 1941 (Diptera).

    Ekabo et al. (1996) señalan propiedades antifúngicas y molusquicidas del "sacha yoco" (Paullinia clavigera Schltdl., Sapindaceae), debido a la concentración de las saponinas. Asimismo, Schultes y Raffauf (1990) indican la presencia de triterpenos, ß-sitosterol y de aceites etéreos en una planta de la misma familia, Serjania (Jacq.) Willd. (Sapindaceae), determinando que los primeros son responsables de actividad ictiotóxica. En la especie congenérica a P. clavigera, Paullinia pinnata L. se han registrado actividades molusquicidas contra Biomphalaria glabrata (Say), hospedero intermediario de Schistosoma mansoni (Sambon) (Melendez y Carriles, 2002), posiblemente debido a flavonas glicosiladas (Abourashed et al., 1999). Pérez y Iannacone (2004) señalan propiedades insecticidas del sacha yoco sobre formas larvarias de A. benarrochi.

    Se han registrado efectos cáusticos, vesicantes  y tóxicos de ciertas especies del género Euphorbia (Pascual, 1996). Se considera a E. cotinifolia como un excelente ictiocida, en comparación con los géneros Lonchocarpus  Kunth y Derris (Wallich) Benth. Se han citado varias especies de Euphorbia con propiedades bactericidas (Cowan, 1999). No se tienen referencias publicadas sobre efectos biocidas de yuquilla (Euphorbia cotinifolia L., Euphorbiaceae).

    El achiote (Bixa orellana L., Bixaceae), es una planta arbustiva, que se encuentra en el ecosistema forestal de los bosques tropicales amazónicos, y ahora es cultivado en el trópico a través de todo el mundo. Su tinte no es tóxico y no altera el sabor del alimento y también tiene varias aplicaciones en los alimentos, cosméticos e industrias farmaceúticas (Glew et al., 1997; Silveira et al., 2002; Lima et al., 2003). Salgado y Campos (2003) han evaluado el efecto fitonematicida de B. orellana sobre la eclosión y mortalidad de Meloidogyne exigua (Goeldi).  Dentro de las plantas repelentes e insecticidas de importancia para Guyana, Surinam y Guyana Francesa se citan B. orellana y piñón blanco (Jathropa curcas L., Euphorbiaceae). En adición, Ramírez et al. (1988) hacen referencia sólo al efecto repelente de B. orellana.

    El objetivo del presente trabajo fue evaluar la mortalidad y repelencia de larvas de Rhynchophorus palmarum L., bajo la acción de diez plantas seleccionadas: ucullucuysacha (Heliotropium indicum L., Boraginaceae), floripondio (Brugmansia sp., Solanaceae), oreja de tigre (T. zebrina, Commelinaceae), piñon blanco (J. curcas, Euphorbiaceae), sacha yoco (P. clavigera, Sapindaceae), yuquilla (E. cotinifolia, Euphorbiaceae), achiote (B. orellana, Bixaceae), retama común (Cassia fistula L., Fabaceae), huancahuisacha (A. pilosa, Aristolochiaceae) y curare (C. tomentosum, Menispermaceae).

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