Obtención de esquejes de boniato a partir de tubérculos mantenidos en condiciones semicontroladas de laboratorio
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Tubérculos sanos de los clones de boniato, Jewel, CEMSA 78-354 e INIVIT B-88, previamente desinfectados, se colocaron en recipientes con agua corriente para inducir su brotación, asperjándose foliarmente a partir de la aparición de los brotes una vez a la semana conformando los siguientes tratamientos: T1: asperjado con solución de tiourea (1.0 g/L), T2: asperjado con solución de ácido giberélico (0.5 g/L) y T3: sin asperjar. Se efectuó el corte de los brotes a los 30, 60, 80, 100 y 120 días después de establecidos los tubérculos. El número de brotes y yemas por tubérculo fue menor a medida que aumentó el número de cortes y el tiempo de establecido el sistema; se determinó que el valor de estos parámetros está influenciado por el genotipo. La aplicación de tiourea (1.0 g/L) influyó negativamente en el número de brotes y yemas por tubérculos.
Abstract
Sound tubers from Jewel, CEMSA 78-354 and INIVIT B-88 sweet potato clones, previously desinfected were put in flask containing running water in order to induce the shoots emergence. Whit this aim they were sprayed once a week, originating 3 different treatment: T1, with thiourea (1.0 g/L) spray, T2 with giberellic acid (0.5 g/L) spray and T3 without any substance addition. The abscission of the formed shoots were done after 30, 60 80, 100 and 120 days from the date of tubers establishment. The recorded parameters number of shoots and number of buds per tuber decrease with the number of abcisions and with the time from the establishment. At the same time it was found that this parameters were influenced by the clone and that application of thiourea (1.0 g/L) was negative for a number of shoots and number of buds per tuber.
El boniato (Ipomoea batatas (L.) Lam.), pertenece a la familia de las Convolvuláceas, siendo la única de esta familia que se cultiva comercialmente como alimento, por poseer raíces comestibles. Actualmente, el boniato ocupa el sexto lugar entre los alimentos más importantes del mundo (Jarret, 1991). En Cuba el boniato se cultiva en casi todas las localidades, pues es un cultivo que se adapta fácilmente a las condiciones climáticas y de suelo, jugando un gran papel desde el punto de vista económico y para la alimentación humana; constituye una fuente de carbohidratos, vitamina A y calcio, de ahí que se pueda considerar un alimento altamente energético; además, su follaje rico en proteínas y minerales es un excelente alimento animal. Actualmente, las mayores dificultades que se afrontan en este cultivo son básicamente: la lentitud y altos costos de los programas de mejoramiento genético convencionales, la disponibilidad y calidad de las semillas, así como los bajos rendimientos que se obtienen. La necesidad de satisfacer las demandas alimenticias de la población, ha exigido la búsqueda de alternativas para disponer de bancos de semillas libres de plagas y enfermedades y con la calidad requerida, entre los que se destacan: La implantación del Sistema de Manejo Integrado de Plagas y Enfermedades (SMIPE), la propagación a través del cultivo de tejidos y otros sistemas de propagación acelerada. En nuestro trabajo evaluamos un sistema para la obtención de esquejes de boniato a partir de tubérculos mantenidos en condiciones semicontroladas, valorando las posibilidades que este ofrece como fuente de semillas.
Se seleccionaron tubérculos de los clones de boniato Jewel, CEMSA 78-354 e INIVIT B- 88, los cuales se agruparon de acuerdo a su peso en 3 grupos: 20-40 g, 40-60 g y mayores de 80 g, libres de daños físicos, de plagas y enfermedades y de conocida pureza varietal, se lavaron cuidadosamente con agua para eliminar los restos de suelo, luego se sumergieron durante 10 minutos en una solución de hipoclorito de sodio al 1% de cloro activo, y se colocaron en cajas de polieturano, añadiéndoles agua corriente hasta cubrir un cuarto del tubérculo para provocar la emisión de brotes. Semanalmente, se cambió el agua y fueron asperjados con una mezcla de fungicidas compuesta por benomil, zined y ridomil (1.0-2.5-5.0 g/L) respectivamente. A partir de la aparición de los brotes, empleando un diseño completamente aleatorizado, se aplicó una vez a la semana el asperjado al follaje de los diferentes clones con: T1 solución de tiourea (1.0 g/L), T2 solución de ácido giberélico (0.5 g/L) y T3 sin asperjar (testigo).
Se evalúo la fecha de brotación. El corte de los brotes se realizó a los: 30, 60, 80, 100 y 120 días posteriores al establecimiento del sistema. Se evaluaron las variables: número de brotes por tubérculo, largo y peso de los brotes y el número de yemas por brote y tubérculo en cada uno de los cortes. Se aplicó un análisis de varianza de clasificación doble para los factores variedad y sustancia estimulante. Los datos obtenidos en relación con la influencia del peso del tubérculo y el número de cortes se procesaron mediante un análisis de varianza simple y se utilizó la prueba de comparación de medias de Tukey para (p< 0.05) cuando existieron diferencias entre los tratamientos. Para el procesamiento de los datos se empleó el paquete estadístico Statistica, los datos originales fueron transformados por la expresión n + 0.5. El experimento fue repetido dos veces.
El inicio de la brotación de los tubérculos varió en dependencia del clon empleado; para el Jewel, el 76.4% de los tubérculos brotaron dentro de los 8 días posteriores a su establecimiento y el resto en el periodo comprendido en los primeros 15 días. En el clon CEMSA 78-354, el 27.2% brotó en los primeros 8 días, el 63.7% hasta los 15 días y el resto hasta los 21 días. En el INIVIT B-88, no hubo brotación en los primeros 10 días, 46.3% dentro de los 15 días y el resto hasta los 25 días, estos resultados coinciden con los obtenidos por Hall (1987) quien al trabajar con diferentes clones de boniato determinó que el tiempo de emergencia de los brotes a partir de tubérculos estuvo en dependencia del genotipo empleado.
Tabla 1: Influencia del genotipo y la aplicación de ácido giberélico y tiourea sobre el número de brotes y yemas por tubérculo, el número de yemas por brotes y el peso y largo de los brotes.
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| Clones |
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| Solución |
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Variables | Jewel | CEMSA 78-354 | INIVIT B-88 | AG3 (0.5 g/L) | Tiourea (1.0 g/L) | Testigo | CV (%) |
Brotes/ tubérculo | 7.44 a | 6.63 ab | 5.53 b | 7.66 a | 4.47 b | 6.94 a | 19.14 |
Yemas/ tubérculo | 86.97 a | 80.52 a | 55.38 b | 87.56 a | 62.72 b | 81.66 a | 16.60 |
Peso de los brotes (g) | 3.72 a | 4.87 a | 4.40 a | 3.75 a | 4.75 a | 4.49 a | 17.00 |
Yemas/ brotes | 11.79 a | 12.08 a | 11.22 a | 11.20 a | 11.66 a | 12.22 a | 8.40 |
Largo de los brotes (cm) | 25.04 a | 27.35 a | 30.89 a | 24.88 a | 24.91 a | 26.77 a | 24.50 |
No existió interacción entre los factores
CV: Coeficiente de Variación
El número de brotes y yemas por tubérculo son variables de gran valor para evaluar la eficiencia del sistema que se estudia, como se muestra en la tabla 1, estas varían entre los clones estudiados; alcanzando los mayores valores en el clon Jewel, sin diferencias con el CEMSA 78-354 y los más bajos se alcanzaron en el clon INIVIT B-88. Al aplicar a los clones estudiados AG3 (0.5 g/L) o no asperjarlos, el número de brotes y yemas por tubérculo es significativamente mayor a cuando estos son asperjados con tiourea, lo que indica un posible efecto inhibitorio de la tiourea sobre estas variables. El peso y largo de los brotes no varia entre los clones estudiados, ni cuando se aplica AG3 (0.5 g/L) y tiourea (1.0 g/L). Hall (1987) plantea que el número potencial de plantas y el tiempo requerido para su propagación a partir de tubérculos varía entre los diferentes cultivares de boniato. Tompkins y Bowers (1970) al sumergir tubérculos de boniato en soluciones con ácido giberélico (250 a 1000 mg/L) antes de la siembra, obtuvieron un incremento en el número total de plantas y la disminución del tiempo requerido para obtenerlas; sin embargo, estas plantas fueron finas y de tallo anormal por lo que no podían ser mecánicamente transplantadas (Tompkins et al.,1973). Hall (1994) al sumergir antes de la siembra en canteros tubérculos de boniato de los clones Georgia Jet y Jewel en soluciones de ácido giberélico (0.5 y 1.0 mg/L) y soluciones combinadas de benziladenina y ácido giberélico (5.0 y 50.0 mg/L), demostró que estas soluciones no tuvieron una marcada influencia en la brotación; sin embargo, los tubérculos sumergidos en solución de benziladenina y ácido giberélico 50.0 mg/L produjeron un 48% de plantas que brotaron más rápido que el testigo no tratado. Jiménez (1998) reporta que al sumergir segmentos de tubérculos de papa (Solanum tuberosum) en soluciones de ácido giberélico (0.3 mM) durante una hora se logra romper la dormancia de las yemas y provocar la emergencia de los brotes en menor de tiempo.
Tabla 2: Influencia del tiempo de establecido el sistema sobre el número de brotes y yemas por tubérculo, yemas por brote, peso y largo de los brotes.
Variables | Tiempo de establecido el sistema (días) | |||||
30 | 60 | 80 | 100 | 120 | CV | |
Brotes/tubérculo | 3.22 a | 2.00 b | 2.20 b | 1.60 b | 1.36 b | 14.18% |
Yemas/brote | 11.17 a | 10.90 a | 11.30 a | 10.58 a | 9.30 a | 10.02% |
Yemas/tubérculo | 32.11 a | 21.45 bc | 25.20 ab | 17.40 bc | 12.82 c | 18.90% |
Peso del brote (g) | 5.27 a | 3.81 ab | 3.40 ab | 3.24 ab | 3.01 b | 16.90% |
CV: Coeficiente de Variación
Como se muestra en la tabla 2, existe una tendencia general a disminuir el valor de las variables evaluadas a medida que transcurre el tiempo de establecido el sistema y aumenta el número de cortes realizados a los brotes, obteniéndose valores significativamente menores del número de brotes y yemas por tubérculos y peso de los brotes a los 120 días con respecto a los 30 días, este comportamiento indica que se produce un agotamiento progresivo de las reservas de los tubérculos, lo cual se expresa a través de una disminución de la vigorosidad de los brotes y la capacidad para su producción.
Tabla 3: Influencia del peso de los tubérculos en el número de brotes y yemas por tubérculo, número de yemas por brotes y peso de los brotes.
Variables | Peso de los tubérculos (g) | |||
20-40
| 40-80 | > 80 | CV | |
Brotes/ tubérculo | 5.50 b | 7.42 a | 8.75 a | 21.09% |
Yemas/ brotes | 10.56 a | 10.66 a | 11.47 a | 13.00% |
Yemas/ tubérculo | 52.00 b | 78.14 ab | 97.08 a | 17.47% |
Peso del brote (g) | 3.56 a | 3.78 a | 4.60 a | 29.00% |
CV: Coeficiente de Variación
El número de brotes y yemas por tubérculo es significativamente menor cuando se emplean tubérculos cuyo peso se encuentra entre los 20–40 g, al compararlos con tubérculos mayores de 80 gramos (Tabla 3), el número de yemas por brote y el peso de los brotes no cambian significativamente al variar el peso de los tubérculos. Tompkins y Horton (1973) encontraron que tubérculos pequeños producen plantas de igual peso que los de mayor tamaño; sin embargo, producen menor número de plantas por tubérculo, lo cual coincide con los resultados alcanzados en el presente trabajo. Hall (1986) al trabajar con tubérculos de boniato del clon Georgia Jet, obtuvo que el tiempo de brotación y la producción de brotes por tubérculo no estuvieron influenciados por el tamaño.
- El número de esquejes producidos por tubérculos depende de la variedad utilizada.
- La aplicación de tiourea (1.0 g/L) provocó la disminución del número de brotes y yemas por tubérculo.
- Se produce una disminución en el número y en el peso de los esquejes a medida que transcurrió el tiempo de establecido el sistema.
4. Cuando se emplean tubérculos de peso superior a los 40 g se obtiene mayor número y peso de los esquejes por tubérculo.
1-. Hall, M.R. (1986) Presprouting, root size and cutting related to plant production by bedded sweet potato roots. HortScience 21 (4): 985-987.
2-. Hall, M. R (1987) Short duration presprouting enhance sweet potato plant production. HortScience 22(2): 314.
3.- Hall, M. R. (1994) Early Sweet potato plant production increased by GA3 and BA plus GA4+7. HortScience 29 (2): 126.
4-. Jarret, R. (1991) Cultivo de Tejidos de Camote. Publicaciones CIAT. Colombia. 20 p.
5-. Jiménez, E. (1998) Cultivo de ápices y meristemos. En: Propagación y Mejora Genética de Plantas por Biotecnología. IBP. J. P. Ponce (edit.) Universidad Central de las Villas. 49 p.
6-. Tompkins, D. R and J.L. Bowers. (1970) Sweet potato plant production as influenced by gibberellin and 2- cloroethylphosphonic acid. HortScience 5: 84-85.
7-. Tompkins, D. R; R. D. Horton and W.A. Sistrunk. (1973) Sprouting of sweet potato treaned with ethephon or gibberellic. Arkansas Farm Res. 22: 10.
8-. Tompkins, D. R and R. D. Horton. (1973) Plant production by sweet potato roots as influenced by ethephon. HortScience. 8: 415-416.
Autores :
Angel Espinosa Reyes
autor para correspondencia
Orlando S. González Paneque
Juan José Silva Pupo
Universidad de Granma. Apdo 21. Bayamo. CP 85100. Granma. Cuba.